بررسی انگل بابزیا میکروتی به روش PCR و تعیین توالی ژن 18S rDNA در کنه‌های سخت استان خوزستان

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی دکتری تخصصی انگل‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

2 استاد گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

3 دانشیار گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

10.22055/ivj.2023.376560.2531

چکیده

    بابزیوز یک بیماری قابل انتقال از کنه در حیوانات اهلی و وحشی در سراسر جهان است.  این بیماری توسط گونه‌های مختلف بابزیا از جمله بابزیا میکروتی ایجاد می‌شود و از اهمیت زئونوتیک بین انسان و حیوان برخوردار است.  اطلاعات محدودی در خصوص حضور بابزیا میکروتی در کنه‌های ایران در دسترس می‌باشد.  هدف از این مطالعه، بررسی حضور بابزیا میکروتی در کنه‌های سخت استان خوزستان و تعیین خصوصیات مولکولی و ژنوتیپی آن‌ها می‌باشد. بررسی حاضر یک نوع مطالعه میدانی- توصیفی- مقطعی می‌باشد که به مدت 16 ماه از ابتدای خرداد 1397 تا پایان شهریور 1398 در استان خوزستان انجام گردید. در این مطالعه، جمع‌آوری کنه‌ها به طرق مختلف از سطح بدن دام‌های استان خوزستان (گاو، گوسفند، بز و اسب) به­صورت تصادفی انجام گردید و در آزمایشگاه انگل‌شناسی دانشکده دامپزشکی با استفاده از کلیدهای تشخیصی معتبر، جنس و گونه کنه‌ها بررسی و تعیین شد. وجود عفونت بابزیا میکروتی و ژنوتیپ آن‌ها در کنه‌های جمع‌آوری شده با استفاده از واکنش زنجیره­ای پلیمراز (PCR) با استفاده از ژن 18S rDNA قطعه 149bp بررسی شد.  در مجموع 620 نمونه غدد بزاقی جمع‌آوری شده کنه‌ها شامل کنه‌‌های ریپی‌سفالوس تورانیکوس (150)، ریپی‌سفالوس سانگینئوس (60)، هیالوما آناتولیکوم (310) و هیالوما اکسکاواتوم (100) بودند.  هر 10 نمونه باهم ترکیب شده و به­عنوان یک نمونه جهت استخراج DNA استفاده شدند.  نتایج PCR نشان داد میزان آلودگی به بابزیا میکروتی در گونه هیالوما آناتولیکوم 64/0% می‎باشد.  نتایج تعیین توالی 4 نمونه PCR مثبت بابزیا میکروتی از 4 منطقه استان خوزستان (اهواز، بهبهان، الهایی و لالی) نشان داد که در ایزوله اهواز، 2 جهش در موقعیت 465 (A>G) و 517 (A>C) وجود دارد.  نتایج این تحقیق نشان‌دهنده­ی وجود آلودگی بابزیا میکروتی در کنه‌های ایکسودیده دام‌های اهلی استان خوزستان بود و درنتیجه از نظر انتقال به انسان باید مورد توجه قرار گیرد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Asante, E. A., Linehan, J. M., Smidak, M., Tomlinson, A., Grimshaw, A., Jeelani, A., ... & Collinge, J. (2013). Inherited prion disease A117V is not simply a proteinopathy but produces prions transmissible to transgenic mice expressing homologous prion protein. PLoS Pathogens, 9(9), e1003643.‏
Blaschitz, M., Narodoslavsky-Gföller, M., Kanzler, M., Stanek, G., & Walochnik, J. (2008). Babesia species occurring in Austrian Ixodes ricinus ticks. Applied and environmental microbiology, 74(15), 4841-4846.‏
Brown, S. J., & Askenase, P. W. (1986). Amblyomma americanum: physiochemical isolation of a protein derived from the tick salivary gland that is capable of inducing immune resistance in guinea pigs. Experimental parasitology, 62(1), 40-50.
Casati, S., Sager, H., Gern, L., & Piffaretti, J. C. (2006). Presence of potentially pathogenic Babesia sp. for human in Ixodes ricinus in Switzerland. Annals of agricultural and environmental medicine, 13(1).
Cotté, V., Bonnet, S., Cote, M., & Vayssier-Taussat, M. (2010). Prevalence of five pathogenic agents in questing Ixodes ricinus ticks from western France. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 10(8), 723-730.
Estrada-Peña, A., Bouattour, A., Camicas, J. L., & Walker, A. R. (2004). Ticks of domestic animals in the Mediterranean region. University of Zaragoza, Spain, 131.
Fallah, E., Aboalsoltani, N., Bazmani, A., Khanmohammadi, M., Hazratian, T., & Shahbazi, A. (2013). Parasitological and molecular investigation of Babesia microti in rodents of Sarab district of east Azerbaijan. Journal of Comparative Pathobiology, 10(3), 1039-1044.
Goethert, H. K., & TELFORD, S. R. (2003). Enzootic transmission of Babesia divergens among cottontail rabbits on Nantucket Island, Massachusetts. The American journal of tropical medicine and hygiene, 69(5), 455-460.
Hamšíková, Z., Kazimírová, M., Haruštiaková, D., Mahríková, L., Slovák, M., Berthová, L., ... & Schnittger, L. (2016). Babesia spp. in ticks and wildlife in different habitat types of Slovakia. Parasites & Vectors, 9(1), 1-14.
Hartelt, K., Oehme, R., Frank, H., Brockmann, S. O., Hassler, D., & Kimmig, P. (2004). Pathogens and symbionts in ticks: prevalence of Anaplasma phagocytophilum (Ehrlichia sp.), Wolbachia sp., Rickettsia sp., and Babesia sp. in Southern Germany. International Journal of Medical Microbiology Supplements, 293, 86-92.
Hildebrandt, A., Hunfeld, K. P., Baier, M., Krumbholz, A., Sachse, S., Lorenzen, T., ... & Straube, E. (2007). First confirmed autochthonous case of human Babesia microti infection in Europe. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 26(8), 595-601.
Hoogstraal, H., & Wassef, H. Y. (1979). Haemaphysalis (Allophysalis) Kopetdaghica: identity and discovery of each feeding stage on the wild goat in northern Iran (Ixodoidea: ixodidae). The Journal of Parasitology, 783-790.
Hornok, S., Kováts, D., Csörgő, T., Meli, M. L., Gönczi, E., Hadnagy, Z., ... & Hofmann-Lehmann, R. (2014). Birds as potential reservoirs of tick-borne pathogens: first evidence of bacteraemia with Rickettsia helvetica. Parasites & vectors, 7(1), 1-7.
Hussain, S., Hussain, A., Aziz, M. U., Song, B., Zeb, J., George, D., & Sparagano, O. (2021). A Review of zoonotic babesiosis as an emerging public health threat in Asia. Pathogens11(1), 23.
Kazimírová, M., Hamšíková, Z., Kocianová, E., Marini, G., Mojšová, M., Mahríková, L., ... & Rosá, R. (2016). Relative density of host-seeking ticks in different habitat types of south-western Slovakia. Experimental and Applied Acarology, 69(2), 205-224.
Krause, P. J. (2019). Human babesiosis. International journal for parasitology, 49(2), 165-174.
Lempereur, L., De Cat, A., Caron, Y., Madder, M., Claerebout, E., Saegerman, C., & Losson, B. (2011). First molecular evidence of potentially zoonotic Babesia microti and Babesia sp. EU1 in Ixodes ricinus ticks in Belgium. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 11(2), 125-130.
Mohebali, M., & Kanani Notash, A. (1997). First report on the diagnosis of Babesia microti in rodents trapped in Meshkinshahr. Veterinary Researches & Biological Products, 10(2), 134-135.
Nzenze, S. A., Shiri, T., Nunes, M. C., Klugman, K. P., Kahn, K., Twine, R., ... & Madhi, S. A. (2013). Temporal changes in pneumococcal colonization in a rural African community with high HIV prevalence following routine infant pneumococcal immunization. The Pediatric infectious disease journal, 32(11), 1270-1278.
Paddock, C. D., & Yabsley, M. J. (2007). Ecological havoc, the rise of white-tailed deer, and the emergence of Amblyomma americanum-associated zoonoses in the United States. Wildlife and emerging zoonotic diseases: the biology, circumstances and consequences of cross-species transmission, 289-324.
Rahbari, S. (1995). Studiesonso meecological aspectsof tick fauna of West Azarbayejan. Iran. J. Appl. Anim. Res, 7, 189-194.
Razmi, G. R., Naghibi, A., Aslani, M. R., Fathivand, M., & Dastjerdi, K. (2002). An epidemiological study on ovine babesiosis in the Mashhad suburb area, province of Khorasan, Iran. Veterinary Parasitology, 108(2), 109-115.
René, M., Chêne, J., Beaufils, J. P., Moro, C. V., Bourdoiseau, G., Mavingui, P., & Chabanne, L. (2012). First evidence and molecular characterization of Babesia vogeli in naturally infected dogs and Rhipicephalus sanguineus ticks in southern France. Veterinary Parasitology, 187(3-4), 399-407.
Reye, A. L., Stegniy, V., Mishaeva, N. P., Velhin, S., Hübschen, J. M., Ignatyev, G., & Muller, C. P. (2013). Prevalence of tick-borne pathogens in Ixodes ricinus and Dermacentor reticulatus ticks from different geographical locations in Belarus. PloS one, 8(1), e54476.
Silaghi, C., Woll, D., Hamel, D., Pfister, K., Mahling, M., & Pfeffer, M. (2012). Babesia spp. and Anaplasma phagocytophilum in questing ticks, ticks parasitizing rodents and the parasitized rodents–analyzing the host-pathogen-vector interface in a metropolitan area. Parasites & Vectors, 5(1), 1-14.
Skotarczak, B., & Cichocka, A. (2001). Isolation and amplification by polymerase chain reaction DNA of Babesia microti and Babesia divergens in ticks in Poland. Annals of Agricultural and Environmental Medicine, 8(2).
Tsuji, M., Wei, Q., Zamoto, A., Morita, C., Arai, S., Shiota, T., ... & Ishihara, C. (2001). Human babesiosis in Japan: epizootiologic survey of rodent reservoir and isolation of new type of Babesia microti-like parasite. Journal of Clinical Microbiology, 39(12), 4316-4322.
Vannier, E., & Krause, P. J. (2012). Human babesiosis. New England Journal of Medicine, 366(25), 2397-2407.
Wielinga, P. R., Fonville, M., Sprong, H., Gaasenbeek, C., Borgsteede, F., & Giessen, J. W. V. D. (2009). Persistent detection of Babesia EU1 and Babesia microti in Ixodes ricinus in the Netherlands during a 5-year surveillance: 2003–2007. Vector-Borne and Zoonotic Diseases, 9(1), 119-122.
Yabsley, M. J., & Shock, B. C. (2013). Natural history of zoonotic Babesia: role of wildlife reservoirs. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 2, 18-31.
Zamoto-Niikura, A., Tsuji, M., Qiang, W., Nakao, M., Hirata, H., & Ishihara, C. (2012). Detection of two zoonotic Babesia microti lineages, the Hobetsu and US lineages, in two sympatric tick species, Ixodes ovatus and Ixodes persulcatus, respectively, in Japan. Applied and environmental microbiology, 78(9), 3424-3430.