تأثیر عصاره‌ی الکلی برگ گزنه، بر تغییرات هیستومورفولوژی و ساختاری حین ترمیم زخم پوستی در موش صحرایی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهیدچمران اهواز، اهواز، ایران

2 دانشیار، گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران

چکیده

    گزنه (Urtica dioica) یکی از مهم­ترین گیاهان بومی است که برای درمان انواع بیماری­ها مورد استفاده قرار می­گیرد، اما اطلاعات محدودی در مورد اثرات مفید آن بر تغییرات بافت­شناسی پوست در طول بهبود زخم در دسترس است.  در مطالعه­ی حاضر اثرات کرم الکلی 5 درصد و 10 درصد عصاره­ی برگ گزنه به عنوان یک داروی آزمایشی در بهبود زخم مورد بررسی قرار گرفت.  موش­های صحرایی به تعداد 30 عدد به طور  صادفی به پنج گروه آزمایشی تقسیم شدند.  ناحیه پشت حیوانات با استفاده از دستگاه پنچر زخمی شده بود.  سپس همه­ی آن­ها دو بار در روز به مدت دو هفته تحت درمان قرار گرفتند.  گروه کنترل در محل زخم نرمال سالین دریافت کردند.  گروه شم حلال یوسرین و گروه فنی توئین پماد 1 درصد دریافت کردند.  دو گروه آزمایشی عصاره گزنه 5 و 10 درصد را دریافت کردند.  در نهایت 14 روز پس از شروع مطالعه تغییرات بافتی در پوست محل زخم، مقدار بافت گرانوله، بلوغ فیبروبلاست بافت گرانوله، رسوب کلاژن، اپیتلیال شدن مجدد، نئوواسکولاریزاسیون، محتوای هیدروکسی پرولین و درصد بهبود زخم در گروه­های مختلف آزمایش‌های مختلف مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. در روز 14 آزمایش، گروه‌های تیمار شده با فنی‌توئین و عصاره­ی گزنه در مقایسه با گروه گروه کنترل تأثیر بهتری بر بهبود زخم داشتند.  محتوای هیدروکسی پرولین در زخم­های خشک شده در گروه­های تحت درمان با عصاره­ی گزنه در مقایسه با گروه کنترل به طور قابل توجهی افزایش یافت.  این یافته­ها در گروه تحت درمان با عصاره­ی 10 درصد به طور قابل توجهی بهتر از گروه تحت درمان با عصاره­ی 5 درصد بود.  این نتایج با تصاویر بافت­شناسی نیز به خوبی تأیید شدند.  با توجه به نتایج به دست آمده، عصاره­ی گزنه تا حدودی شبیه به داروهای شیمیایی رایج ترمیم‌کننده زخم مانند فنی‌توئین، تأثیر مثبتی بر تغییرات پوستی حین بهبود زخم داشته و این اثرات وابسته به دوز بوده است.

کلیدواژه‌ها


Abramov, Y., Golden, B., Sullivan, M., Botros, S. M., Miller, J. J. R., Alshahrour, A., ... & Sand, P. K. (2007). Histologic characterization of vaginal vs. abdominal surgical wound healing in a rabbit model. Wound repair and regeneration, 15(1), 80-86. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2006.00188.x
Alsarayreh, A.Z.A., Attalah Oran, S., Shakhanbeh, J. M. (2022). In vitro and in vivo wound healing activities of Globularia arabica leaf methanolic extract in diabetic rats. Journal of Cosmetic Dermatology, 1-13. https://doi.org/10.1111/jocd.14882
Alsarayreh, A.Z.A., Oran, S.A., & Shakhanbeh, J.M. (2021). Effect of Rhus coriaria L. methanolic fruit extract on wound healing in diabetic and non‐diabetic rats. Journal of Cosmetic Dermatology. https://doi.org/10.1111/jocd.14668
Babaei, E., Asghari, M. H., Mehdikhani, F., Moloudizargari, M., Ghobadi, E., & Pouya, S. R. H. (2017). The healing effects of herbal preparations from Sambucus ebulus and Urtica dioica in full-thickness wound models. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 7(5), 421-427. https://doi.org/10.1016/j.apjtb.2017.01.013
Blanks, T., Brown, S., Cosgrave, B., Woody, J., Bentley, V., & O'Sullivan, N. (1998). The Body Shop Book of Wellbeing Mind. Body, and Soul, Ebury Press, London, UK.
Bacci, S. (2022). Fine regulation during wound healing by mast cells, a physiological role not yet clarified. International Journal of Molecular Sciences, 23(3), 1820. https://doi.org/10.3390/ijms23031820
Chen, C. C., Mo, F. E., & Lau, L. F. (2001). The angiogenic factor Cyr61 activates a genetic program for wound healing in human skin fibroblasts. Journal of Biological Chemistry, 276(50), 47329-47337. https://doi.org/10.1074/jbc.M107666200
Čoma, M., Fröhlichová, L., Urban, L., Zajíček, R., Urban, T., Szabo, P., ... & Gál, P. (2021). Molecular changes underlying hypertrophic scarring following burns involve specific deregulations at all wound healing stages (Inflammation, proliferation and maturation). International Journal of Molecular Sciences, 22(2), 897. https://doi.org/10.3390/ijms22020897
Dvorak, H. F. (2021). Reconciling VEGF with VPF: the importance of increased vascular permeability for stroma formation in tumors, healing wounds, and chronic inflammation. Frontiers in Cell and Developmental Biology, 9, 660609. https://doi.org/10.3389/fcell.2021.660609
Eming, S. A., Krieg, T., & Davidson, J. M. (2007). Inflammation in wound repair: molecular and cellular mechanisms. Journal of Investigative Dermatology, 127(3), 514-525. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700701
Fatemi, I., Khalili, H., Mehrzadi, S., Basir, Z., Malayeri, A., & Goudarzi, M. (2021). Mechanisms involved in the possible protective effect of chrysin against sodium arsenite-induced liver toxicity in rats. Life Sciences, 267, 118965. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2020.118965
Gucker, C. L., & Shaw, N. L. (2020). Nettleleaf giant hyssop (Agastache urticifolia [Benth.] Kuntze). In: Gucker, Corey L.; Shaw, Nancy L., eds. Western forbs: Biology, ecology, and use in restoration. Reno, NV: Great Basin Fire Science Exchange; Fort Collins, CO: US Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station. http://greatbasinfirescience. org/western-forbs-restoration
Gutowska, I., Jakubczyk, K., Dec, K., Baranowska-Bosiacka, I., Drozd, A., Janda, K., & Chlubek, D. (2014). Effect of the extract from nettle (Urtica dioica L.) fruit cluster on the synthesis of pro-inflammatory agents in hepatocytes treated with fluoride. Fluoride, 47(2), 109-118.
Harborne, A. J. (1998). Phytochemical methods a guide to modern techniques of plant analysis. Springer science & business media. 5th edition, Chapman & Hall Ltd, London, 21-72.
Hosseinzadeh, A., Jani, A. M., Karimi, M. Y., Siahpoosh, A., Goudarzi, M., & Malayeri, A. (2021). Evaluating the effect of hydro-alcoholic extract of Phoenix dactylifera L. spathe on streptozotocin-induced diabetic rats. Comparative Clinical Pathology, 30(2), 163-171. https://doi.org/10.1007/s00580-021-03221-4
Huang, J., Heng, S., Zhang, W., Liu, Y., Xia, T., Ji, C., & Zhang, L. J. (2022). Dermal extracellular matrix molecules in skin development, homeostasis, wound regeneration and diseases. In Seminars in Cell & Developmental Biology. Academic Press. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2022.02.027
Ishida, Y., Kuninaka, Y., Furukawa, F., Kimura, A., Nosaka, M., Fukami, M., ... & Kondo, T. (2018). Immunohistochemical analysis on aquaporin-1 and aquaporin-3 in skin wounds from the aspects of wound age determination. International Journal of Legal Medicine, 132(1), 237-242. https://doi.org/10.1007/s00414-017-1725-0
Javadi, I., Rashidi Nooshabadi, M., Goudarzi, M., & Roudbari, R. (2015). Protective effects of celery (Apium graveloens) seed extract on bleomycin-induced pulmonary fibrosis in rats. Journal of Babol University of Medical Sciences, 17(1), 70-76. http://jbums.org/article-1-5220-en.html
Kajdaniuk, D., Marek, B., Borgiel-Marek, H., & Kos-Kudła, B. (2011). Vascular endothelial growth factor (VEGF)—part 1: in physiology and pathophysiology. Endokrynologia Polska, 62(5), 444-455.
Kamar, S. S., Abdel-Kader, D. H., & Rashed, L. A. (2019). Beneficial effect of Curcumin Nanoparticles-Hydrogel on excisional skin wound healing in type-I diabetic rat: Histological and immunohistochemical studies. Annals of Anatomy-Anatomischer Anzeiger, 222, 94-102. https://doi.org/10.1016/j.aanat.2018.11.005
Kumar Srivastava, A., Khare, P., Kumar Nagar, H., Raghuwanshi, N., & Srivastava, R. (2016). Hydroxyproline: a potential biochemical marker and its role in the pathogenesis of different diseases. Current Protein and Peptide Science, 17(6), 596-602
Lazarides, M. K., & Giannoukas, A. D. (2007). The role of hemodynamic measurements in the management of venous and ischemic ulcers. The International Journal of Lower Extremity Wounds, 6(4), 254-261. https://doi.org/10.1177/1534734607306878
Malayeri, A., Abdevand, Z. Z., Rashedi, M., Hamedi, S. S., Basir, Z., & Golfakhrabadi, F. (2022). Determination of the Effectiveness of Topical Product of Commiphora Mukul Oleo Gum Resin on Dermal Wound Healing: An Experimental Study. The International Journal of Lower Extremity Wounds, 15347346221123640.
Mescher, A. L. (2018). Junqueira's basic histology text & atlas. 15th edition. Universitas Muhammadiyah Semarang.
Mohammadi, M. H., Molavi, B., Mohammadi, S., Nikbakht, M., Mohammadi, A. M., Mostafaei, S., ... & Ghavamzadeh, A. (2017). Evaluation of wound healing in diabetic foot ulcer using platelet-rich plasma gel: A single-arm clinical trial. Transfusion and Apheresis Science, 56(2), 160-164. https://doi.org/10.1016/j.transci.2016.10.020
Monika, P., Waiker, P. V., Chandraprabha, M. N., Rangarajan, A., & Murthy, K. N. C. (2021). Myofibroblast progeny in wound biology and wound healing studies. Wound Repair and Regeneration, 29(4), 531-547. https://doi.org/10.1111/wrr.12937
Moulin, V., Auger, F. A., Garrel, D., & Germain, L. (2000). Role of wound healing myofibroblasts on re-epithelialization of human skin. Burns, 26(1), 3-12. https://doi.org/10.1016/S0305-4179(99)00091-1
Mozaffarian, V. (1996). A dictionary of Iranian plant names. Tehran: Farhang Moaser, 396.
Nemati, D., Ashjari, M., Rashedi, H., Yazdian, F., & Navaei‐Nigjeh, M. (2021). PVA based nanofiber containing cellulose modified with graphitic carbon nitride/nettles/trachyspermum accelerates wound healing. Biotechnology Progress, 37(6), 3200. https://doi.org/10.1002/btpr.3200
Nigussie, D., Makonnen, E., Tufa, T. B., Brewster, M., Legesse, B. A., Fekadu, A., & Davey, G. (2021). Systematic review of Ethiopian medicinal plants used for their anti-inflammatory and wound healing activities. Journal of Ethnopharmacology, 276, 114179. https://doi.org/10.1016/j.jep.2021.114179
Numata, Y., Terui, T., Okuyama, R., Hirasawa, N., Sugiura, Y., Miyoshi, I., ... & Ohtsu, H. (2006). The accelerating effect of histamine on the cutaneous wound-healing process through the action of basic fibroblast growth factor. Journal of Investigative Dermatology, 126(6), 1403-1409. https://doi.org/10.1038/sj.jid.5700253
Peplow, P. V., & Baxter, G. D. (2012). Gene expression and release of growth factors during delayed wound healing: a review of studies in diabetic animals and possible combined laser phototherapy and growth factor treatment to enhance healing. Photomedicine and laser surgery, 30(11), 617-636. https://doi.org/10.1089/pho.2012.3312
Priyadarshi, A., Keshri, G. K., & Gupta, A. (2022). Hippophae rhamnoides L. leaf extract diminishes oxidative stress, inflammation and ameliorates bioenergetic activation in full-thickness burn wound healing. Phytomedicine Plus, 100292. https://doi.org/10.1016/j.phyplu.2022.100292
Rawat, G., Bameta, A., Gaur, A. (2020). Urtica dioica (Stinging Nettle): A Pharmacologically Important Medicinal Plant Species of Himalayan Region. International Research Journal of Pure and Applied Chemistry, 21(17), 49-58. https://doi.org/10.9734/IRJPAC/2020/v21i1730265
Rayburn, K., Fleischbein, E., Song, J., Allen, B., Kundert, M., Leiter, C., & Bush, T. (2009). Stinging nettle cream for osteoarthritis. Alternative Therapies in Health & Medicine, 15(4), 60.
Raziyeva, K., Kim, Y., Zharkinbekov, Z., Kassymbek, K., Jimi, S., & Saparov, A. (2021). Immunology of acute and chronic wound healing. Biomolecules, 11(5), 700. https://doi.org/10.3390/biom11050700
Salih, N. A. (2014). Antibacterial effect of nettle (Urtica dioica). Al-Qadisiyah Journal of Veterinary Medicine Sciences, 13(1), 1-6. https://doi.org/10.29079/vol13iss1art270
Tai, Y., Woods, E. L., Dally, J., Kong, D., Steadman, R., Moseley, R., & Midgley, A. C. (2021). Myofibroblasts: function, formation, and scope of molecular therapies for skin fibrosis. Biomolecules, 11(8), 1095. https://doi.org/10.3390/biom11081095
Tottoli, E. M., Dorati, R., Genta, I., Chiesa, E., Pisani, S., & Conti, B. (2020). Skin wound healing process and new emerging technologies for skin wound care and regeneration. Pharmaceutics, 12(8), 735. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12080735
Warren P. 101 uses for Stinging Nettles. Wildeye United Kingdom, 2006, 80.
Zeković, Z., Cvetanović, A., Švarc-Gajić, J., Gorjanović, S., Sužnjević, D., Mašković, P., ... & Đurović, S. (2017). Chemical and biological screening of stinging nettle leaves extracts obtained by modern extraction techniques. Industrial Crops and Products, 108, 423-430. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2017.06.055.