مطالعه هیستومتریک تخمدان موالید در موش های صحرایی مواجهه شده با استات سرب با استفاده از تکنیک استریولوژی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی دکترای بافت شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران

2 استاد گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران

3 دانشیار گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران

چکیده

    با گسترش فرآیندهای صنعتی، آلودگی با فلزات سنگین به عنوان مثال سرب، به یک مشکل جدی تبدیل شده است.  آن­ها توانایی عبور از ارگان­ها را داشته و سبب اختلال در عملکرد آن­ها می­شود.  یکی از ارگان­های مورد هدف سرب بافت تخمدان است.  همچنین سرب قادر است از سد خونی­­ – جفتی عبور و به جنین منتقل شود.  همچنین سرب از طریق شیر به نوزاد نیز امکان­پذیر است.  این مطالعه جهت بررسی اثر آلودگی سرب با دوز پایین در مادر بر روی تکوین تخمدان موالید با استفاده از تکنیک استریولوژی در مدل حیوانی رت انجام شد.  در پژوهش حاضر، موش­های صحرایی نژاد ویستار به صورت تصادفی به پنج گروه تقسیم­بندی شدند.  گروه­ها شامل کنترل و 4 گروه­ تجربی پیش­آبستنی، آبستنی، شیرواری و پیش­آبستنی- آبستنی- شیرواری بودند.  گروه­های تجربی استات سرب را به میزان 2/0 درصد به همراه 5/0 سی­سی اسیداستیک گلاسیال از طریق آب آشامیدنی دریافت کردند.  مصرف استات بدین صورت بود که در گروه پیش­آبستنی 30 روز قبل از جفت­گیری، گروه آبستنی 21 روز دوره آبستنی، گروه شیرواری طی 21 روز دوره شیردهی و گروه پیش­آبستنی- آبستنی شیرواری از 30 روز قبل از جفت­گیری تا انتهای دوره شیرواری 2/0درصد استات­سرب را از طریق آب آشامیدنی دریافت کردند.  در روز 65ام بعد از تولد، تمام موالید در آزمایشگاه آسان­کشی و نمونه­های سمت چپ تخمدان جهت مطالعات استریولوژی جمع­آوری شدند.  بررسی نتایج نشان داد که حجم کل تخمدان، کورتکس، مدولا، بافت بینابینی و حجم کل فولیکول­ها بین گروه­های کنترل و تجربی اختلاف معنی­داری نداشتند.  بررسی حجم جسم زرد نشان داد که گروه پیش­آبستنی در مقایسه با گروه آبستنی کاهش معنی­داری داشت.  مطالعه حاضر نشان داد که مواجهه مادران با استات سرب با دوز کم سبب کاهش حجم جسم زرد موالید به خصوص در دوران پیش­آبستنی می­شود.

کلیدواژه‌ها


Albishtue, A.A; Yimer, N; Zakaria Z.A; Haron, A.W; Rosnina, Y. and Almhanawi B.H. (2018). Ameliorating effect of edible bird’s nest against lead acetate toxicity on the rat hypothalamic–pituitary–ovarian axis and expressions of epidermal growth factor and vascular endothelial growth factor in ovaries, Comparative Clinical Pathology. https://doi.org/10.1007/s00580-018-2729-y
Antonio-Garcia, M.T. and Masso-Gonzalez, E.L. (2008). Toxic effects of perinatal lead exposure on the brain of rats: Involvement of oxidative stress and the beneficial role of antioxidants. Food and chemical toxicology, 46(1): 2089-2095.
Azarnia, M; Shakour, A; Rostami, P. and Sanaiemehr, A. (2004). The protective role of L-Cysteine against Follicular atresia induced by Lead in Mouse ovary. Acta Medica Iranica, 42(2): 83-88.
 Barkur, R.R. and Bairy, L.K. (2014): Histological study on hippocampus, amygdala and cerebellum following low lead exposure during prenatal and postnatal brain development in rats. Toxicology and industrial health.1: 1-12.
Dahmardeh, M; Sadeghinezhad J; Tootian Z. and Salehnia M. (2020). Morphometric Analysis of Offspring Ovary in Mice Following Oxaliplatin Treatment during Perinatal Period Using Stereology Technique. Journal of Ardabil University of Medical Sciences, 20(1): 32-48.
 Dorostghoal, M; Moazedi A.A. and Moattari, M. (2011). Long-term Developmental Effects of Lactational Exposure to Lead Acetate on Ovary in Offspring Wistar Rats. Royan Institute International Journal of Fertility and Sterility, 5(1): 39-46.
 Dumitrescu, E; Chiurciu, V; Muselin, F; Popescu, R; Brezovan, D. and Cristina, R. T. (2015). Effects of long-term exposure of female rats to low levels of lead: ovary and uterus histological architecture changes. Turkish Journal of Biology, 39: 284- 289.
Ericson, B; Landrigan, P; Taylor, M.P; Frostad, J; Caravanos, J; Keith, J. and Fuller, R.(2016). The Global Burden of Lead Toxicity Attributable to Informal Used Lead-Acid Battery Sites. Annals Global Health, 82: 686–699.
Garu, U; Sharma, R. and Barber, I. (2011). effect of lead toxicity on developing testis of mice. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 2 (9): 2043- 2407.
Gertrude, J; Vermande-Van, E. and Wister M. (1960). Changes in the Ovary of the Rhesus Monkey After Chronic Lead Intoxication. Fertility & Sterility, 11(2): 223- 234.  
 Gundersen, H.J; Bagger, P; Bendtsen, T.F; Evans, S.M; Korbo, L; Marcussen, N. et al. (1988). The new stereological tools: disector, fractionator, nucleator and point sampled intercepts and their use in pathological research and diagnosis. acta pathologica, microbiologica, et immunologica Scandinavica, 96: 857-881.
 Howard, C.V. and Reed, M.G. (2005). Unbiased Stereology: Three-Dimensional Measurment in microscopy (2nd ed). Garland Science/BIOS Scientific Publishers, UK.
 Jaako-Movits, k; Zharkovasky, T; Romantchik, O; Jurgenson, M; Mersalu, E; Heidmets, L.T. and Zharkovasky, A. (2005). Developmental lead exposure impairs contextual fear conditioning and reduces adult hippocampal neurogenesis in the rat brain. International Journal of Developmental Neuroscience, 23: 350-627.
 Junaid, M; Chowdhuri, D.K. and Narayan, R. (1997). Lead- induced changes in Ovarian follicular development and maturation in mice. Journal of Toxicology and Environmental Health, 50: 31–40.
 Li, Y; Wang, X; Lu, Y; Wang, Y; Mao, B; Dai, Z. and Liu Q. (2020). Lead Acetate on the Growth and Development of Mouse Blastocyst after Transplantation in Vitro. Revista Científica, FVC-LUZ, 30(5): 2654-2662.
 McGivern, RF; Sokol, RZ. and Berman NG. (1991). Prenatal lead expo­sure in the rat during the third week of gestation: long-term behavioral, physiological, and anatomical effects associ­ated with reproduction. Toxicol Appl Pharmacol, 110 (2): 206- 215.
 Nampoothiri, LP. and Gupta, S. (2006). Simultaneous effect of lead and cadmium on granulose Cells: a cellular model for ovarian toxicity. Reprod Toxicol, 21: 179-85.
Omar Balubaid S. (2012). The Curial Effect of Vinegar in Reducing the Serious Damages of Lead on the Histological Structure of Some Organs of Embryos and Mature Female Albino Mice. Life Science Journal, 9(2): 805 –811.
 Patriarca, M; Menditto, A; Rossi, B; Lyon, T.D.B. and Fell, G.S. (2000). Environmental exposure to metals of newborns, infants and young children. Microchemical Journal, 67: 351-361.
 Pirooty, Sh. and Ghasemzadeh, M. (2013). Toxic effects of Lead on different organs of the human body. FEYZ Journal of Kashan University of Medical Sciences. 16(7): 761-762.
 Rafati Rahimzadeh, M; Rafati Rahimzadeh, M; Kazemi, S. and Moghadamnia, A.A. (2015). AnUpdate on Lead Poisoning. J Babol Univ Med Sci. 17(3): 35-50.
 Restanty, D.A; Soeharto, S. and Indrawan, I.W.A. (2018). The effect of oral lead acetate exposure on bax expression and apoptosis index granulose cells antral follicle in female Wistar rat (Rattus norvegicus). Asian Pacific Journal of Reproduction, 6(2): 54-57.
 Sharma, R; Garu, U. and Panwar, K. (2012). Developing Gonads and Lead Exposure. World Journal of Environmental Biosciences, 11: 30-37.
Shubina, O.S. and Dudenkova, N.A. (2014). Modficatons of the Morphological Structure of Ovaries and the Estral Cycles of Albino Rat Females under the Effect of Lead Acetate. Global Veterinaria, 12(4): 449-454.
 Sodani, I.J. (2017). Study the adverse effects of exposure to lead acetate on mice ovarian. IJAR, 5(5): 727- 735.
 Taupeau, C; Poupon, J; Nomé, F. and Lefèvre B. (2001). Lead accumu­lation in the mouse ovary after treatment-induced follicular atresia. Reprod Toxicol, 15(4): 385-391.
 Treuting, P.M; Dintzis, S.M. Frevert, C.W; Liggitt, D. and Montine K.S. (2012). Comparative Anatomy and Histology: A:  Mouse and Human Atlas. Academic Press, London. 253-284.
 Waseem, N; Hamid, S. and Butt, S.A. (2014). Effect of lead acetate on follicular count of mice ovary and the protective role of garlic extract. Pak Armed Forces, 64 (1): 61-65.