نشریه دامپزشکی ایران

نشریه دامپزشکی ایران

شناسایی پروتئین­های آنتی ژنی ستاریا لابیاتوپاپیلوزا در گاو (باس تورس)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 استاد گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2 دانشجوی دکترای تخصصی انگل‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
3 استاد گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
4 استاد گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
10.22055/ivj.2025.535366.2819
چکیده
ستاریا لابیاتوپاپیلوزا یکی از نماتدهای انگلی موجود در گاو است که باعث آنسفالیت کرمی در میزبان‌های غیر اختصاصی می‌شود. پروتئین‌های آنتی‌ژنی می‌توانند برای توسعه آزمایش‌های تشخیصی و واکسن‌ها مورد استفاده قرار گیرند. این مطالعه با هدف تعیین پروفایل پروتئینی و آنتی‌ژنی ستاریا لابیاتوپاپیلوزا در گاو با استفاده از ایمونوبلاتینگ انجام شد. نمونه‌ها از گاوها در کشتارگاه اهواز گرفته شدند. عصاره‌های خام سوماتیک نماتد بالغ و میکروفیلاریا (به عنوان پروتئین‌ها یا آنتی‌ژن‌های S و MF به طور جداگانه با همگن‌سازی تهیه شدند. مواد دفعی ترشحی (ES) با انکوباسیون 5 نماتد بالغ در محیط RPMI، (3 میلی‌لیتر برای هر نماتد) حاوی پنی‌سیلین (100 واحد در میلی‌لیتر) و استرپتومایسین (100 میکروگرم در میلی‌لیتر) تهیه شدند. پروفایل پروتئینی و خواص آنتی‌ژنی نمونه‌های ES، S و MF نماتد ستاریا لابیاتوپاپیلوزا با الکتروفورز ژل پلی‌اکریل‌آمید سدیم دودسیل سولفات (SDS-PAGE) تعیین شد. خواص ایمنی‌زایی پروتئین‌ها با استفاده از ایمونوبلاتینگ و سرم‌های مثبت از گاوهای آلوده به نماتد بالغ تعیین شد. بیش از دو، 8 و 15 باند پروتئینی غالب در وزن مولکولی 200 تا 22 کیلو دالتون در ژل‌های SDS-PAGE نمونه‌های ES، MF و S نشان داده شد. در نتیجه، در ایمونوبلاتینگ ES، MF و S به ترتیب دو، 14 و 4 باند آنتی‌ژنی غالب مشاهده شد. نتایج ایمونوبلاتینگ ES، MF و S در ستاریا لابیاتوپاپیلوزا نشان داد که پروتئین‌های 68 و 64 کیلو دالتونی رایج‌ترین اجزای آنتی‌ژنی هستند که می‌توانند کاندیداهای بالقوه‌ای برای تحقیقات آینده در مورد تشخیص ایمونولوژیکی اختصاصی ستاریازیس گاوی باشند.
کلیدواژه‌ها
موضوعات

Alborzi, A. R., Bahrami, S., & Khajeh, F. (2022). A Preliminary Study on the Antigenic Proteins of Linguatula serrata Nymphal Stage in Sheep with Visceral Linguatulosis. Archives of Razi Institute77(1), 13-18.
Alborzi, A. R., Seyfiabadshapouri, S. M., & Hoghoughirad, N. (2006). Identification of excretory-secretory products from larval stages of Ostertagia circumcincta cultured in vitro by SDS-PAGE and immunoblotting. Iranian Journal of Veterinary Research, 7(30),13-16.
Alborzi, A, R., Haddadmolayan, P., Tabandeh, M. R., & Ghorbanpoor, M. (2019). Ultrastructural and molecular characteristics of Setaria species based on sequence analysis of genomic and mitochondrial gene markers in cattle (Bos taurus) and buffaloes (Bubalus bubalis) from Iran. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society70(4), 1777-1788.
Alborzi, A. R., Ghorbanpoor, M., Hamidinejat, H., Chamanara, S., & Noori, S. (2016). Seroprevalence of Linguatula serrata nymph infection in sheep from west of Iran by ELISA. Iranian Veterinary Journal, 12(2),11-17.
Alborzi, A., Jolodar, A., & Seyfiabadshapouri, M. S. A. (2014). Isolation and identification of excretory-secretory and somatic antigens from the Oestrus ovis larvae by SDS-PAGE and immunoblotting. In Veterinary Research Forum (Vol. 5, No. 4, p. 307).
Anderson, R. C. (2000). Nematode parasites of vertebrates: their development and transmission. Cabi, 479-482.
Bazargani, T., Esmaeili, A., Gholami, G. R., Moulaei, A., Ghafari, C. J., Davoudi, J., & Ashrafi, J. (2008). Cerebrospinal nematodiasis of cattle, sheep and goats in Iran. Iranian Journal of Parasitology, 3(1):16-20.
Berezhko, V. K., Khaydarov, V. K., Napisanova, L. A., & Thakahova, A. A. (2016). Mature Setaria labiatopapillosa in cattle-a source for receiving antigens for diagnosis of dirofilariasis (Dirofilaria immitis). Rossiĭskiĭ Parazitologicheskiĭ Zhurnal, (2), 192-201.
Beuria, M. K., Bal, M., & Das, M. K. (1995). Allergic reactivity and IgG subclasses to a proteinase fraction of Setaria digitata in filariasis. Journal of helminthology69(3), 181-185.
Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry72(1-2), 248-254.
Bright, J. J., & Raj, R. K. (1991). Isolation and analysis of surface antigens of filarial nematode Setaria digitataIndian Journal of Experimental Biology29(8), 725-729.
Cancrini, G., Pietrobelli, M. A. R. I. O., Di Regalbono, A. F., & Tampieri, M. P. (1997). Mosquitoes as vectors of Setaria labiatopapillosaInternational journal for parasitology27(9), 1061-1064.
Cancrini, G., Pietrobelli, M. A. R. I. O., Di Regalbono, A. F., & Tampieri, M. P. (1997). Mosquitoes as vectors of Setaria labiatopapillosaInternational journal for parasitology27(9), 1061-1064.
Dalai, S. K., Das, D., & Kar, S. K. (1998). Setaria digitata adult 14-to 20-kDa antigens induce differential Thl/Th2 cytokine responses in the lymphocytes of endemic normals and asymptomatic microfilariae carriers in bancroftian filariasis. Journal of clinical immunology18(2), 114-123.
Dissanayake, S., & Ismail, M. M. (1980). Antigens of Setaria digitata: cross-reaction with surface antigens of Wuchereria bancrofti microfilariae and serum antibodies of W. bancrofti-infected subjects. Bulletin of the World Health Organization58(4), 649.
Karunamoorthi, K., & Sabesan, S. (2013). Insecticide resistance in insect vectors of disease with special reference to mosquitoes: a potential threat to global public health. Health Scope. 2(1) 4-18.
Kaushal, N. A., Srivastava, N., Mustafa, H., Tandon, A., Singh, S. K., & Kaushal, D. C. (2009). Isolation of an antigen fraction from Setaria cervi adults having potential for immunodiagnosis of human filariasis. Immunological Investigations38(8), 749-761.
Khedri, J., Radfar, M. H., Borji, H., & Azizzadeh, M. (2014). An epidemiological survey of Setaria in the abdominal cavities of Iranian Sistani and Brahman cattle in the southeastern of Iran. Iranian Journal of Parasitology9(2), 249.
Kim, N. S., Kim, H. C., Sim, C., Ji, J. R., Kim, N. S., & Park, B. K. (2010). Congenital infection with Setaria digitata and Setaria marshalli in the thoracic cavity of a Korean calf: a case report. Veterinární medicína55(6), 275-280.
Kutz, S. J., Ducrocq, J., Verocai, G. G., Hoar, B. M., Colwell, D. D., Beckmen, K. B., ... & Hoberg, E. P. (2012). Parasites in ungulates of Arctic North America and Greenland: a view of contemporary diversity, ecology, and impact in a world under change. Advances in parasitology79, 99-252.
Laaksonen, S., Solismaa, M., Kortet, R., Kuusela, J., & Oksanen, A. (2009). Vectors and transmission dynamics for Setaria tundra (Filarioidea; Onchocercidae), a parasite of reindeer in Finland. Parasites & Vectors2(1), 1-10.
Laemmli, U. K. (1970). Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. nature227(5259), 680-685.
Madathiparambil, M. G., Kaleysa, K. N., & Raghavan, K. (2009). A diagnostically useful 200-kDa protein is secreted through the surface pores of the filarial parasite Setaria digitataParasitology research105(4), 1099-1104.
Mahmoud, O. M., Haroun, E. M., & Omer, O. H. (2004). An outbreak of neurofilariosis in young goats. Veterinary parasitology120(1-2), 151-156.
Malhotra, A. N. J. U., Kaushal, N. A., Kaushal, D. C., & Ghatak, S. (1987). Antigenic characterization of excretory-secretory products of Setaria cerviTropical Medicine and Parasitology: Official Organ of Deutsche Tropenmedizinische Gesellschaft and of Deutsche Gesellschaft fur Technische Zusammenarbeit (GTZ)38(2), 106-110.
Mohanty, B. P., Dalai, S. K., & Kar, S. K. (2006). IgG4-reactive low molecular weight antigens from Setaria digitata adult parasites have immunodiagnostic potential in lymphatic filariasis. Current Science, 1221-1225.
Mohanty, B. P., Dalai, S. K., & Kar, S. K. (2006). IgG4-reactive low molecular weight antigens from Setaria digitata adult parasites have immunodiagnostic potential in lymphatic filariasis. Current Science, 1221-1225.
Mrifag, R., Lemrabott, M. A., El Kharrim, K., Belghyti, D., & Basco, L. K. (2021). Setaria labiatopapillosa (Filarioidea, Nematoda) in Moroccan cattle: atypical localization and morphological characterization of females and microfilariae by light and scanning electron microscopy. Parasitology Research120(3), 911-918.
Nakano, H., Tozuka, M., Ikadai, H., Ishida, H., Goto, R., Kudo, N., ... & Oyamada, T. (2007). Morphological survey of bovine Setaria in the abdominal cavities of cattle in Aomori and Kumamoto Prefectures, Japan. Journal of veterinary medical science69(4), 413-415.
Pokharel, D. R., Rai, R., Kodumudi, K. N., Reddy, M. V. R., & Rathaur, S. (2006 a). Vaccination with Setaria cervi 175 kDa collagenase induces high level of protection against Brugia malayi infection in jirds. Vaccine24(37-39), 6208-6215.
Pokharel, D. R., Rai, R., Kumar, P., Chaturvedi, C. M., & Rathaur, S. (2006 b). Tissue localization of collagenase and leucine aminopeptidase in the bovine filarial parasite Setaria cerviFilaria journal5(1), 1-8.
Raj, R. K., Pradeep, C. G., Devi, C. M., John, L., Rekha, M. R., & Oommen, S. K. (1997). Immunomodulation of excretory secretory materials from the filarial parasite Setaria digitataIndian Journal of Clinical Biochemistry12(1), 32-34.
Rashidi, S., Kalantar, K., & Hatam, G. (2018). Using proteomics as a powerful tool to develop a vaccine against Mediterranean visceral leishmaniasis. Journal of Parasitic Diseases42(2), 162-170.
Razi Jalali, M. H., Ghorbanpoor, M., Pourmahdi Borujeni., &Khodadadian, V. (2014). Evaluation of counterimmunoelectrophoresis method for detection of somatic circulating antigen of Fasciola gigantica in bovine sera. Iranian Veterinary Journal10(1), 30-36.
 Richer, J. K., Sakanari, J. A., Frank, G. R., & Grieve, R. B. (1992). Dirofilaria immitis: proteases produced by third-and fourth-stage larvae. Experimental parasitology75(2), 213-222.                      
Ring, C. S., Sun, E., McKerrow, J. H., Lee, G. K., Rosenthal, P. J., Kuntz, I. D., & Cohen, F. E. (1993). Structure-based inhibitor design by using protein models for the development of antiparasitic agents. Proceedings of the national academy of Sciences90(8), 3583-3587.
Rodrigues, R. A. R., Conga, D. M. F., Santos, J. N. D., Gonçalves, E. C., Pinheiro, R. H. D. S., & Giese, E. G. (2021). Morphological diagnosis of Setaria labiatopapillosa in domestic bovids from Marajó Island, Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária30(3), e004321.
Sasisekhar, B., Suba, N., Sindhuja, S., Sofi, G. M. A., & Narayanan, R. B. (2005). Setaria digitata: identification and characterization of a hypodermally expressed SXP/RAL2 protein. Experimental parasitology111(2), 121-125.
Sharma, S., Misra, S., & Rathaur, S. (1998). Secretory acetylcholinesterase of Setaria cervi microfilariae and its antigenic cross‐reactivity with Wuchereria bancroftiTropical Medicine & International Health3(1), 46-51.
Shin, J., Ahn, K. S., Suh, G. H., Kim, H. J., Jeong, H. S., Kim, B. S., ... & Shin, S. S. (2017). First blindness cases of horses infected with Setaria digitata (Nematoda: Filarioidea) in the Republic of Korea. The Korean Journal of Parasitology55(6), 667.
Singh, H., Singh, N. K., Singh, N. D., Jyoti, & Rath, S. S. (2015). Occurrence of Setaria labiatopapillosa in peritoneal cavity of a crossbred cattle. Journal of Parasitic Diseases39(2), 152-154.
Subhachalat, P., & Adachi, Y. (1997). Classification of Setaria worms from calves and adult cattle into Setaria digitata and Setaria marshalli by polyacrylamide gel electrophoresis. Zentralblatt für Bakteriologie286(4), 527-533.
Subhachalat, P., Shirasaka, S., Nakajima, H., & Adachi, Y. (1999). Setaria digitata in cattle of Thailand identified by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis. Journal of veterinary medical science61(4), 443-445.
Sundar, S. B., D’souza, P. E., & Jagannath, M. S. (2005). Prevalence of setariosis in cattle and buffaloes in Karnataka. Journal of Parasitic Diseases29, 147-149.
Takesue, M., Osaka, Y., Muranaka, M., Katayama, Y., & Ikadai, H. (2016). Identification of immunodiagnostic antigens for cerebrospinal filariasis in horses by western blot analysis. Journal of Equine Science27(1), 17-18.
Towbin, H., Staehelin, T., & Gordon, J. (1979). Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proceedings of the national academy of sciences76(9), 4350-4354.
Tung, K. C., Lai, C. H., Ooi, H. K., Yang, C. H., & Wang, J. S. (2003). Cerebrospinal setariosis with Setaria marshalli and Setaria digitata infection in cattle. Journal of Veterinary Medical Science65(9), 977-983.
Virginio, V. G., Monteiro, K. M., Drumond, F., de Carvalho, M. O., Vargas, D. M., Zaha, A., & Ferreira, H. B. (2012). Excretory/secretory products from in vitro-cultured Echinococcus granulosus protoscoleces. Molecular and Biochemical Parasitology183(1), 15-22.
Wang, M. Z., Ye, K. X., & Hu, L. S. (1986). Study on etiology of" lumbar paralysis" in horses, sheep and goats. In Proceedings of the 4th international symposium on veterinary epidemiology and economics Changchun Veterinary College, Changchun, Jilin, China., Singapore, 283-284.
Watanabe, Y., Yang, C. H., Tung, K. C., & Ooi, H. K. (2004). Comparison of microfilaria concentration method for Setaria digitata infection in cattle and for Dirofilaria immitis infection in dogs. Journal of veterinary medical science66(5), 543-545.

مقالات آماده انتشار، اصلاح شده برای چاپ
انتشار آنلاین از 07 شهریور 1405