نشریه دامپزشکی ایران

نشریه دامپزشکی ایران

بررسی تأثیر استفاده از اسپرم اپیدیدیمی در روند تولید آزمایشگاهی جنین‌ گوسفند بر قابلیت تکوینی جنین‌ها متعاقب انتقال جنین

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشیار پژوهشکده فناوری جنین دام، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
2 استاد پژوهشکده فناوری جنین دام، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران و گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
3 دانشیار پژوهشکده فناوری جنین دام، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران و گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
4 استادیار مرکز علم و فناوری امنیت غذایی و کشاورزی (غدیر)، دانشگاه جامع امام حسین (ع)، تهران، ایران
5 استادیار گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
6 مربی مرکز علم و فناوری امنیت غذایی و کشاورزی (غدیر)، دانشگاه جامع امام حسین (ع)، تهران، ایران
چکیده
    تولید آزمایشگاهی جنین در کنار انتقال جنین در گونه­ های مختلف حیوانات اهلی به کار می­رود و پتانسیل بالقوه فراوانی در افزایش بهره‌وری تولید و نیز افزایش سرعت اصلاح ژنتیکی گله­ ها ایفا می­ کند.  اسپرم استحصال شده از ناحیه دم اپیدیدیم منبع مهمی برای گامت‌های دام‌های دارای ارزش اصلاحی بالا و گونه‌های در معرض خطر انقراض است.  مطالعه حاضر به منظور بهینه‌سازی و کاربردی کردن فناوری انتقال جنین‌‌های تولید شده در آزمایشگاه و نیز بررسی قابلیت تکاملی جنین‌های آزمایشگاهی تولید شده با استفاده از اسپرم اپیدیدیمی متعاقب انتقال جنین انجام شد.  ابتدا میش‌های گیرنده جنین، به مدت 12 روز سیدرگذاری شدند.  همزمان با خروج سیدر، به هر میش 400 واحد PMSG تزریق شد.  روز بعد از خروج سیدر، روند تولید جنین‌های آزمایشگاهی در دو گروه با استفاده از اسپرم اپیدیدیمی (749 تخمک در 6 تکرار) و اسپرم انزالی (540 تخمک در 4 تکرار) شروع شد.  9 روز پس از خروج سیدر، 2 عدد جنین‌ 6 روزه در مرحله بلاستوسیست به صورت نیمه لاپاروسکوپیک به رحم هر گیرنده جنین منتقل شد (38 گیرنده گروه اسپرم اپیدیدیمی، 32 گیرنده گروه اسپرم انزالی).  آبستنی، 44 روز پس از انتقال جنین به روش اولتراسونوگرافی در گیرنده‎‌ها تعیین شد.  نتایج به دست آمده نشان داد که در بین گروه اسپرم اپیدیدیمی و گروه اسپرم انزالی از نظر شاخص‌های تکوین جنین در آزمایشگاه (میزان تسهیم: 7/1±0/83 درصد در مقابل 27/3±9/71 درصد؛ میزان بلاستوسیست 3/1±8/39 درصد در مقابل 31/1±5/33 درصد، به ترتیب) و نیز از نظر میزان آبستنی (50 درصد در مقابل 7/45 درصد، به ترتیب)، بره‌زایی (25 درصد در مقابل 9/21 درصد، به ترتیب) و سایر شاخص‌های بررسی شده اختلاف معنی‌داری مشاهده نشد.  از روش‌های استفاده شده در مطالعه حاضر می‌توان برای انتقال جنین‌های گوسفند در شرایط مزرعه استفاده کرد.  همچنین بر اساس نتایج این مطالعه می‌توان گفت اسپرم اپیدیدیمی در گوسفند از نظر قابلیت تکاملی تفاوتی با اسپرم انزالی ندارد.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


Ahmadi, E., Shams-Esfandabadi, N., Nazari, H., Davoodian, N., & Kadivar, A. (2022). Ram epididymal sperm frozen in an extender containing ethylene glycol have higher post-thaw longevity and in vitro fertility. Andrology, 10(3), 604-613. doi:10.1111/andr.13137
Bergstein-Galan, T., Weiss, R., Barbosa, T., Kozicki, L., & Bicudo, S. (2018). Viability of ovine spermatozoa collected from epididymides stored at 18°-25° C for 48 hours post mortem. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 70, 1023-1028.
Bergstein-Galan, T. G., Weiss, R. R., Bertol, M. A. F., Abreu, A. C. M. R., Busato, E., Kozicki, L. E., & Bicudo, S. D. (2017). Quality and fertility of frozen ovine spermatozoa from epididymides stored at room temperature (18–25 °C) for up to 48 h post mortem. Theriogenology, 96, 69-75.
Cognié, Y., Poulin, N., Locatelli, Y., & Mermillod, P. (2004). State-of-the-art production, conservation and transfer of in-vitro-produced embryos in small ruminants. Reproduction, Fertility and Development, 16(4), 437-445.
Ehling, C., Rath, D., Struckmann, C., Frenzel, A., Schindler, L., & Niemann, H. (2006). Utilization of frozen–thawed epididymal ram semen to preserve genetic diversity in Scrapie susceptible sheep breeds. Theriogenology, 66(9), 2160-2164.
Falchi, L., Ledda, S., & Zedda, M. T. (2022). Embryo biotechnologies in sheep: Achievements and new improvements. Reproduction in Domestic Animals, 57 Suppl 5(Suppl 5), 22-33. doi:10.1111/rda.14127
Fickel, J., Wagener, A., & Ludwig, A. (2007). Semen cryopreservation and the conservation of endangered species. European Journal of Wildlife Research, 53, 81-89.
Ishwar, A. K., & Memon, M. A. (1996). Embryo transfer in sheep and goats: a review. Small Ruminant Research, 19(1), 35-43.
King, C., Osborn, D., & Grupen, C. (2022). Multiple ovulation and embryo transfer in sheep: Effects of embryo developmental stage and quality on viability in vivo under farm conditions. Australian Veterinary Journal, 100(9), 451-458.
Larsson, B., Gustafsson, A., Nasholm, A., & Bjurström, L. (1991). A programme for oestrus synchronization and embryo transfer in sheep. Reproduction in Domestic Animals, 26(6), 301-308.
Licea, M. G., Pichardo, J. E. H., Rodríguez, J. L., García-Contreras, A., Rosales, B. C., Palma-Irizarry, M., . . . Kjelland, M. E. (2018). 130 In Vitro Production of Hybrid Desert Bighorn × Domestic Sheep Embryos Using Frozen–Thawed Epididymal Semen from a Hunter-Harvested Ram. Reproduction, Fertility and Development, 30(1), 205-205.
Menchaca, A., Barrera, N., dos Santos Neto, P., Cuadro, F., & Crispo, M. (2018). Advances and limitations of in vitro embryo production in sheep and goats. Animal Reproduction (AR), 13(3), 273-278.
Menchaca, A., & Rubianes, E. (2004). New treatments associated with timed artificial insemination in small ruminants. Reproduction, Fertility and Development, 16(4), 403-413.
Selionova, M. I., Aibazov, M. M., & Zharkova, E. K. (2023). Cryopreservation and Transfer of Sheep Embryos Recovered at Different Stages of Development and Cryopreserved Using Different Techniques. Animals, 13(14), 2361.
Sharkey, S., Callan, R. J., Mortimer, R., & Kimberling, C. (2001). Reproductive Techniques in Sheep. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 17(2), 435-455.
Songsasen, N., Tong, J., & Leibo, S. (1998). Birth of live mice derived by in vitro fertilization with spermatozoa retrieved up to twenty‐four hours after death. Journal of Experimental Zoology, 280(2), 189-196.
Tonamo, A. (2015). Review on Status of Animal Biotechnology and Options for Improving Animal Production in Developing Countries. Journal of Biology, Agriculture and Healthcare, 5(19), 21-31.
Zhu, J., Moawad, A. R., Wang, C. Y., Li, H. F., Ren, J. Y., & Dai, Y. F. (2018). Advances in in vitro production of sheep embryos. Int J Vet Sci Med, 6(Suppl), S15-s26.