نشریه دامپزشکی ایران

نشریه دامپزشکی ایران

مطالعه و شناسایی سلول‌های زایای اولیه در گناد جنین قرقاول ماده (Phasianus colchicus) با استفاده از تکنیک‌های مختلف بافت‌شناسی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشجوی دکتری تخصصی بافت‌شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
2 استاد گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
چکیده
    هدف از این تحقیق شناسایی و بررسی حضور سلول‌های زایای اولیه در سنین مختلف جنینی در بافت تخمدان قرقاول بود.  این سلول­ها تنها سلول‌های در حال رشد رویان هستند که توانایی انتقال اطلاعات ژنتیکی از طریق گامتوژنز به نسل بعدی را دارند.  به منظور مطالعه در این خصوص، پرندگان به دلیل ویژگی­ های رشدی خود ارزش فوق­ العاده ­ای دارند.  از طرفی قرقاول از جمله پرندگانی است که دارای خواص بسیار مفیدی است اما متأسفانه این گونه نادر در خطر انقراض قرار دارد.  در این مطالعه، تعداد 28 عدد تخم نطفه­ دار قرقاول مورد استفاده قرار گرفت و گنادهای جنین ماده با توجه به عدم تقارن آن­ها متمایز و در روزهای 24-9 جنینی استخراج شدند.  مقاطع بافتی به صورت سریال سکشن تهیه شدند و شناسایی سلول­های زایای اولیه با استفاده از رنگ ­آمیزی­ های هماتوکسیلین–ائوزین، پریودیک اسید شیف و همچنین تهیه مقاطع نیمه نازک و رنگ ­آمیزی آن­ها با تولوئیدین بلو انجام گرفت.  سپس با استفاده از تکنیک­ های استریولوژی، تعداد، حجم سلول و حجم هسته سلول‌های زایای اولیه محاسبه گردید.  سلول‌های زایای اولیه در برش­های پارافینی و رزینی در روزهای 9 تا 14 جنینی به دلیل ویژگی‌های خاص شامل اندازه بزرگ هسته و سیتوپلاسم کم شناسایی شدند.  ضمناً پاسخ این سلول­ها در تمام سنین به رنگ ­آمیزی پاس منفی بود.  با توجه به نتایج مربوط به مطالعه استریولوژی، مشخص شد با افزایش سن از تعداد سلول­های زایای اولیه کاسته می­شود به طوری که در 18 روزگی این سلول­ها مشاهده نشدند.  در حالی که حجم سلول­های زایای اولیه و حجم هسته این سلول­ها با افزایش سن افزایش یافته بود.  یافته‌های این مطالعه نشان داد که سلول‌های زایای اولیه در بافت تخمدان جنین‌های قرقاول در تمام سنین آزمایش‌ شده به رنگ­ آمیزی پریودیک اسید شیف پاسخ منفی دادند در حالی که مشخص شد رنگ ­آمیزی هماتوکسیلین و ائوزین و استفاده از مقاطع نیمه نازک برای تشخیص میکروسکوپیک این سلول­ها مناسب هستند.  از نظر مورفولوژی این سلول در قرقاول تفاوت خاصی با سایر پرندگان نداشت اما از نظر هیستوشیمی پاسخ این سلول به رنگ ­آمیزی پریودیک اسید شیف منفی بود که با بعضی از گونه ­های پرندگان متفاوت است.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


Adamski, M., & Kuźniacka, J. (2006). The effect of age and sex on slaughter traits of pheasants (Phasianus colchicus L.). Animal Science Papers and Reports24(Supplement 2), 11-18.
Armengol, C., Carretero, A., Nacher, V., Ruberte, J., & Navarro, M. (2007). Carbohydrate characterization of quail primordial germ cells during migration and gonadal differentiation. Journal of Anatomy210(1), 98-111
Carlon, N. (1985). Origin of the somatic components of chick embryonic gonads. Archives d'anatomie microscopique et de morphologie experimentale74(1), 52-59.
Chojnacka-Puchta, L., Kasperczyk, K., Plucienniczak, G., Sawicka, D., & Bednarczyk, M. (2012). Primordial germ cells (PGCs) as a tool for creating transgenic chickens. Polish Journal of Veterinary Sciences15(1), 181-188.
Clinton, M., & Haines, L. C. (2001). An overview of factors influencing sex determination and gonadal development in birds. Genes and Mechanisms in Vertebrate Sex Determination, (91), 97-115.
Dastghaib, S., Gholizadeh, F., Mokaram, P., & Noorafshan, A. (2022). Stevia aquatic extract protects the pancreas from streptozocin (STZ) induced damage: A stereological study. Indian Journal of Experimental Biology (IJEB)60(05), 299-307.
D’Costa, S., Pardue, S. L., & Petitte, J. N. (2001). Comparative development of avian primordial germ cells and production of germ line chimeras. Avian and Poultry Biology Reviews12(4), 151-168.
England, M. A., & Matsumura, G. (1993). Primordial germ cells in the primitive streak stages chick embryo as studied by scanning electron microscopy. Journal of anatomy183(Pt 1), 67-73.
Fujimoto, T., Ukeshima, A., & Kiyofuji, R. (1976). The origin, migration and morphology of the primordial germ cells in the chick embryo. The Anatomical Record185(2), 139-153.
González‐Morán, M. G. (2011). Histological and stereological changes in growing and regressing chicken ovaries during development. The Anatomical Record: Advances in Integrative Anatomy and Evolutionary Biology294(5), 893-904.
Guioli, S., & Lovell-Badge, R. (2007). PITX2 controls asymmetric gonadal development in both sexes of the chick and can rescue the degeneration of the right ovary. Development, 134(23), 4199-4208.
Hassanzadeh, B., Nabipour, A., & Dehghani, H. (2019). Ostrich (Struthio camelus) primordial germ cells in embryonic blood and presumptive gonad: characterization by PAS and immunohistochemistry. Iranian Journal of Veterinary Research20(4), 299-303.
Hosseini, A., Nabipour, A., & Dehghani, H. (2020). Characterizing Primordial Germ Cells in the
Turkey (Meleagris Gallopavo) Embryo. Anatomical Sciences Journal, 17(2), 63-72.
Howard, V., & Reed, M. (2004). Unbiased stereology: three-dimensional measurement in microscopy. Garland Science.
Intarapat, S., & Stern, C. D. (2013). Chick stem cells: current progress and future prospects. Stem Cell Research11(3), 1378-1392.
Intarapat, S., & Stern, C. D. (2014). Left-right asymmetry in chicken embryonic gonads. The Journal of Poultry Science51(4), 352-358.
Intarapat, S., & Satayalai, O. (2014). Microanatomical study of embryonic gonadal development in Japanese quail (Coturnix japonica). Anatomy Research International2014(168614), 1-9.
Jung, J. G., Kim, D. K., Park, T. S., Lee, S. D., Lim, J. M., & Han, J. Y. (2005). Development of novel markers for the characterization of chicken primordial germ cells. Stem Cells23(5), 689-698.
Johnson, A. L. (2015). Reproduction in the female. In Sturkie's avian physiology (pp. 635-665). Academic Press.
Kheirabadi, M., Nabipour, A., Behnam Rassouli, M., & Dehghani, H. (2015). Morphological development of ovaries in ostrich (Struthio camelus) embryo. Comparative Clinical Pathology24, 1185-1191.
Kim, Y. M., & Han, J. Y. (2018). The early development of germ cells in chicken. International Journal of Developmental Biology62(1-2-3), 145-152.
Macdonald, J., Glover, J. D., Taylor, L., Sang, H. M., & McGrew, M. J. (2010). Characterisation and germline transmission of cultured avian primordial germ cells. PloS one5(11), e15518.
Mathan, Zaib, G., Jin, K., Zuo, Q., Habib, M., Zhang, Y., & Li, B. (2023). Formation, Application, and Significance of Chicken Primordial Germ Cells: A Review. Animals13(6), 1096.
Meng, L., Wang, S., Jiang, H., Hua, Y., Yin, B., Huang, X. & Zhu, G. (2022). Oct4 dependent chromatin activation is required for chicken primordial germ cell migration. Stem Cell Reviews and Reports18(7), 2535-2546.
Mohamed A.M. Alsafy, Samir A, El-Gendy, Ashraf A, Karkoura, Doha Shokry. (2017). Pre-Hatching Development of the Alexandria Chicken Ovaries.  Academia Anatomica International, 3(2), 34-43.
Mohamed, G. K., Selim, A. A., Abdelhafeez, H. H., & Mo-hamed, M. B. (2017). Histomorphological Developmental Stud-ies of the Left Ovary in the Japanese quail (Coturnix Coturnix Japonica). MJ Cyto, 1 (1): 002.
Mohammadi Gheshlagh, F., Hosseini, A., & Nabipour, A. (2023). The identification of the primordial germ cells in the male gonads of pheasant (Phasianus colchicus) embryos using histochemical and immunostaining techniques. Iranian Veterinary Journal19(1), 52-60.
Naeemipour, M., & Bassami, M. (2013). Isolation, culture and characterization of chicken primordial germ cells. Journal of Cell and Molecular Research5(2), 48-53.
Nakamura, Y., Kagami, H., & Tagami, T. (2013). Development, differentiation and manipulation of chicken germ cells. Development, growth & differentiation55(1), 20-40.
Neisy, A., Koohpeyma, F., Khorchani, M. J., Karimi, F., & Zal, F. (2023). Quercetin modulates ovarian autophagy–related molecules and stereological parameters in a rat model of PCOS. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine13(1), 9.
Pardanaud, L., Altmann, C., Kitos, P., Dieterlen-Lievre, F., & Buck, C. A. (1987). Vasculogenesis in the early quail blastodisc as studied with a monoclonal antibody recognizing endothelial cells. Development100(2), 339-349.
Rosenthal, N. F., Ellis, H., Shioda, K., Mahoney, C., Coser, K. R., & Shioda, T. (2010). High-throughput applicable genomic sex typing of chicken by TaqMan real-time quantitative polymerase chain reaction. Poultry science89(7), 1451-1456.
Smith, C. A., & Sinclair, A. H. (2004). Sex determination: insights from the chicken. Bioessays26(2), 120-132.
Sopiyana, S., Setiadi, M. A., Fahrudin, M., & Supriatna, I. (2017). Isolation and number of gonadal primordial germ cells (gonadal PGCs) on the stages of early embryonic development of KUB chicken. Media Peternakan40(1), 1-6.
Suvarna, K. S., Layton, C., & Bancroft, J. D. (2018). Bancroft's theory and practice of histological techniques. Elsevier health sciences.
Szczerba, A., Kuwana, T., & Bednarczyk, M. (2021). Concentration and total number of circulating primordial germ cells in Green-legged Partridgelike chicken embryos. Poultry science, 100(1), 319-324.