نشریه دامپزشکی ایران

نشریه دامپزشکی ایران

بررسی ارزش تغذیه‌ای گیاه آلترنانترا سیسیلیس (Alternanthera sessilis) قرمز برای نشخوارکنندگان

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانش‌آموخته کارشناسی ارشد، دانشکده‌ علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
2 استاد گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
چکیده
    آزمایش حاضر با هدف تعیین ترکیب شیمیایی و قابلیت هضم و تخمیر گیاه آلترنانترا سیسیلیس قرمز و مقایسه ارزش تغذیه‌ای آن با یونجه به صورت انفرادی یا در قالب جیره‌های بره­های پرواری انجام شد.  چهار تیمار آزمایشی شامل ۱- شاهد (فاقد آلترنانترا سیسیلیس)، ۲- جیره حاوی 3 درصد (20 درصد جایگزینی با یونجه)، ۳- 6 درصد (۴0 درصد جایگزینی با یونجه) و ۴- 9 درصد (۶0 درصد جایگزینی با یونجه) آلترنانترا سیسیلیس بود.  قابلیت هضم و تخمیر نمونه‌های آزمایشی با روش تولید گاز و آزمایش هضم دومرحله‌ای سنجش شد.  قرابت زیادی از نظر ترکیب شیمیایی بین آلترنانترا سیسیلیس با یونجه وجود داشت.  افزودن گیاه آلترنانترا سیسیلیس به جیره بره‌های پرواری باعث افزایش معنی‌دار مقدار ماده آلی واقعا تجزیه شده، انرژی قابل متابولیسم، انرژی خالص شیردهی و قابلیت هضم ظاهری ماده آلی شد؛ به طوری که این شاخصه‌ها در تیمار حاوی ۹ درصد گیاه آلترنانترا سیسیلیس بیش­ترین مقدار بودند.  از طرفی، با استفاده از گیاه آلترنانترا سیسیلیس در جیره قابلیت هضم ماده خشک تمایل به افزایش نشان داد.  مقدار تولید توده زنده میکروبی، بازده تولید توده زنده میکروبی تحت تأثیر جیره‌های آزمایشی قرار نگرفتند.  قیمت جیره‌های حاوی گیاه آلترنانترا سیسیلیس ارزان‌تر از جیره شاهد بود.  بنابراین می‌توان بیان کرد که ارزش تغذیه‌ای گیاه آلترنانترا سیسیلیس با علوفه یونجه قابل مقایسه است و می‌توان آن را تا ۶۰ درصد با یونجه در جیره بره‌های پرواری جایگزین کرد.  انجام آزمایش‌های دامی‌ نیز توصیه می‌شود. 
کلیدواژه‌ها

موضوعات


AOAC. (2012). Official methods of analysis of Association of Official Analytical Chemists, 19th ed. Gaithersburg.
Bakhshizadeh, S., Taghizadeh, A., Janmohammadi, H., & Alijani, S. (2014). Chemical composition and the nutritive value of pistachio epicarp (in situ degradation and in vitro gas production techniques). Veterinary Research Forum, 5(1), 43-47.
Blümmel, M., & Bullerdieck, P. (1997). The need to complement in vitro gas production measurements with residue determinations from in sacco degradabilities to improve the prediction of voluntary intake of hays. Animal Science64(1), 71-75.
Souhil, B., Samir, B., Lyas, B., Amal, H., Ibtissem, B., Nour-Elhouda, A. & Secundino., L. (2022). In vitro gas production and fermentation parameters of some plants species collected from algerian arid rangelands. Journal of Rangeland Science, 12 (1), 77-86.
Coblentz, W. K., Nellis, S. E., Hoffman, P. C., Hall, M. B., Weimer, P. J., Esser, N. M., & Bertram, M. G. (2013). Unique interrelationships between fiber composition, water-soluble carbohydrates, and in vitro gas production for fall-grown oat forages. Journal of dairy science96(11), 7195-7209.
Cushnie, T. T., & Lamb, A. J. (2011). Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids. International journal of antimicrobial agents38(2), 99-107.
García-González, R., López, S., Fernández, M., & González, J. S. (2006). Effects of the addition of some medicinal plants on methane production in a rumen simulating fermenter (RUSITEC). International Congress Series, 1293, 172-175. Elsevier.
He, Y., Cone, J. W., Hendriks, W. H., & Dijkstra, J. (2020). Relationships between chemical composition and in vitro gas production parameters of maize leaves and stems. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition104(1), 12-21.
Hyde, M., Wursten, B., Ballings, P., & Palgrave Coates, M. (2021). Flora of Zimbabwe: Species Information: Pinus patula. Flora of Zimbabwe. https://www. zimbabweflora. co. zw/speciesdata/species. php.
Jiménez-Peralta, F. S., Salem, A. Z. M., Mejia-Hernández, P., González-Ronquillo, M., Albarrán-Portillo, B., Rojo-Rubio, R., & Tinoco-Jaramillo, J. L. (2011). Influence of individual and mixed extracts of two tree species on in vitro gas production kinetics of a high concentrate diet fed to growing lambs. Livestock Science136(2-3), 192-200.
Kumari, E. V., & Krishnan, V. (2016). Qualitative and quantitative estimation of phytochemicals of Alternanthera sessilis (l) r. Br. Ex. Dc and Alternanthera Philoxeroides (mart). Griseb. International Journal of Botany and Research6(4), 29-34.
Menke, K.H., Raab, L., Salewski, A., Steingass, H., Fritz, D. & Schneider, W. (1979). The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they m incubated with rumen liquor in vitro. J. Agric. Sci., 93: 217-222.
Mondal, H., Saha, S., Awang, K., Hossain, H., Ablat, A., Islam, M. K., ... & Uddin, S. J. (2014). Central-stimulating and analgesic activity of the ethanolic extract of Alternanthera sessilis in mice. BMC complementary and alternative medicine14(1), 1-9.
NRC, National Research Council (US). Committee on Nutrient Requirements of Small Ruminants. (2007). Nutrient requirements of small ruminants: sheep, goats, cervids, and new world camelids.
Newbold, C. J., De La Fuente, G., Belanche, A., Ramos-Morales, E., & McEwan, N. R. (2015). The role of ciliate protozoa in the rumen. Frontiers in microbiology6, 1313.
Nooriyan Soroor, E., & Rouzbehan, Y. (2013). The influence of golpar (Heracleum persicum) on in vitro rumen fermentation parameter, sand on methane production. Iranian Journal of animal Science44(4), 385-395. doi: 10.22059/ijas.2013.50382.
Nooriyan Soroor, E., & Rouzbehan, Y. (2014). Effect of Echium amoenum extract on plasma metabolites and methane estimate mehraban male lambs. Iranian Journal of animal Science, 44(3), 273-282. doi: 10.22059/ijas.2013.36155.
Noviandi, C. T., Kustaantinah, K., Irawan, A., Widyobroto, B. P., & Astuti, A. (2021). Determination of in vitro gas production kinetics by adding Leucaena leucecophala and corn oil to the ration in different ratios. Iranian Journal of Applied Animal Science11(1), 23-31.
Ørskov, E. R., & McDonald, I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science92(2), 499-503.
Othman, A., Ismail, A., Hassan, F.A., Yusof, B.N.M., & Khatib, A., (2016). Comparative evaluation of nutritional compositions, antioxidant capacities, and phenolic compounds of red and green sessile Joyweed (Alternanthera sessilis). J. Funct.Foods 21, 263–271.
Patra, A. K., & Saxena, J. (2010). A new perspective on the use of plant secondary metabolites to inhibit methanogenesis in the rumen. Phytochemistry71(11-12), 1198-1222.
Sallam, S. M. A., Bueno, I. C. S., Brigide, P., Godoy, P. B., Vitti, D. M. S. S., & Abdalla, A. L. (2009). Efficacy of eucalyptus oil on in vitro ruminal fermentation and methane production. Options Mediterraneennes85(85), 267.
Sirohi, S. K., Pandey, N., Goel, N., Singh, B., Mohini, M., Pandey, P., & Chaudhry, P. P. (2009). Microbial activity and ruminal methanogenesis as affected by plant secondary metabolites in different plant extracts. International Journal of Environmental Science and Engineering1(1), 52-58.
Snelling, T. J., Auffret, M. D., Duthie, C. A., Stewart, R. D., Watson, M., Dewhurst, R. J., ... & Walker, A. W. (2019). Temporal stability of the rumen microbiota in beef cattle, and response to diet and supplements. Animal Microbiome1, 1-14.
Sommai, S., Cherdthong, A., Suntara, C., So, S., Wanapat, M., & Polyorach, S. (2021). In vitro fermentation characteristics and methane mitigation responded to flavonoid extract levels from Alternanthera sissoo and dietary ratios. Fermentation7(3), 109.
Tilley, J. M. A., & Terry, D. R. (1963). A two‐stage technique for the in vitro digestion of forage crops. Grass and forage science18(2), 104-111.
Van Soest, P.J., Rabertson, J.b., & Lewis, B.A. (1991). Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. nutritional ecology of the ruminant. Journal of Dairy Science, 74(10): 3583-3597.
Zhu, Z., Difford, G. F., Noel, S. J., Lassen, J., Løvendahl, P., & Højberg, O. (2021). Stability assessment of the rumen bacterial and archaeal communities in dairy cows within a single lactation and its association with host phenotype. Frontiers in Microbiology12, 636223.