نشریه دامپزشکی ایران

نشریه دامپزشکی ایران

تأثیر سطوح مختلف تریپتوفان در جیره ­های کم پروتئین بر عملکرد، برخی فراسنجه ­های خونی، ظرفیت آنتی­ اکسیدانی و مورفولوژی روده جوجه ­های گوشتی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانش‌آموخته دکترای تغذیه دام و طیور، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
2 استاد گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3 استاد گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
4 دانشیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
5 دانشجوی فیزیولوژی دام و طیور، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
چکیده
    استفاده از اسیدآمینه ­های سنتتیک در جیره ­های کم پروتئین باعث بهبود عملکرد جوجه­ های گوشتی می­شود.  این آزمایش به منظور ارزیابی تأثیر سطوح مختلف اسیدآمینه­ تریپتوفان در جیره­ های غذایی کم پروتئین بر عملکرد جوجه ­های گوشتی انجام شد.  برای انجام این آزمایش از تعداد 200 قطعه جوجه گوشتی نر یک روزه سویه راس 308 از سن 8 تا 21 روزگی با 4 تیمار، 5 تکرار و 10 پرنده در هر تکرار استفاده گردید.  تیمارهای آزمایشی بر اساس جداول برزیلی تنظیم شدند که شامل: 1- تیمار شاهد (میزان سطح پروتئین و تریپتوفان توصیه شده)، 2- سطح توصیه شده تریپتوفان در جیره با 2 درصد پروتئین پایین، ­3- 5 درصد بیش­تر از سطح توصیه شده تریپتوفان در جیره ولی با 2 درصد پروتئین کمتر و 4- 10 درصد بیش­تر از سطح توصیه شده تریپتوفان ولی در جیره با 2 درصد پروتئین کمتر بودند.  نتایج نشان داد که تیمار حاوی 10 درصد تریپتوفان بیش­تر به طور معنی­ داری باعث افزایش وزن (8/721 گرم) جوجه­ ها شد.  اما کاهش پروتئین جیره به طور معنی ­داری باعث کاهش مصرف خوراک شد.  همچنین تیمار 4، به طور معنی ­داری باعث کاهش مقدار گلوکز، تری­گلیسیرید، پروتئین کل و گلبولین خون جوجه ­ها شد.  اما کلسترول و آلبومین تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفت.  مصرف 10 درصد تریپتوفان باعث افزایش معنی­ دار سوپراکسیدیسموتاز (6/171) و گلوتاتیون­پراکسیداز خون (4/179) گردید.  پروتئین بالای جیره (تیمار شاهد) باعث افزایش اوره و اسیداوریک خون شد و همچنین نیتروژن بستر را افزایش داد.  مرفولوژی روده تحت تأثیر نوع جیره آزمایشی قرار نگرفت.  به طور کلی افزودن تریپتوفان در جیره ­های کم پروتئین باعث بهبود عملکرد و افزایش ظرفیت آنتی اکسیدانی خونی گردید. 
کلیدواژه‌ها

موضوعات


Abdel-Wahab, M. H., & Abd-Allah, A. R. (2000). Possible protective effect of melatonin and desferrioxamine against streptozotocin-induced hyperglycaemia in mice. Pharmacological Research41(5), 533-537.
Akbarian, A., Michiels, J., Golian, A., Buyse, J., Wang, Y., & De Smet, S. (2014). Gene expression of heat shock protein 70 and antioxidant enzymes, oxidative status, and meat oxidative stability of cyclically heat-challenged finishing broilers fed Origanum compactum and Curcuma xanthorrhiza essential oils. Poultry Science93(8), 1930–1941.
Ali Panah, A., Danishyar, M., Farhoumand, P., & Najafi, G. (2016). The effect of threonine and tryptophan amino acids on performance, carcass characteristics, blood parameters and ileal morphology of broiler chickens under heat stress. Journal of Animal Research (Iranian Journal of Biology), 4, 53-66. (In Farsi)
Awad, E. A., Fadlullah, M., Zulkifli, I., Soleimani, A. F., & Loh, T. C. (2014). Amino acids fortification of low-protein diet for broilers under tropical climate: Ideal essential amino acids profile. Italian Journal of Animal Science13(2), 3166.
Bai, M., Liu, H., Xu, K., Oso, A. O., Wu, X., Liu, G., & Tossou, M. C. B. (2017). A review of the immunomodulatory role of dietary tryptophan in livestock and poultry. Amino Acids, 49, 67–74.
Bartell, S. M., & Batal, A. B. (2007). The effect of supplemental glutamine on growth performance, development of the gastrointestinal tract, and humoral immune response of broilers. Poultry Science86(9), 1940-1947.
Café, M. B., & Waldroup, P. W. (2006). Interactions between levels of methionine and lysine in broiler diets changed at typical industry intervals. International Journal of Poultry Science5(11), 1008-1015.
Chan, T. Y., & Tang, P. L. (1995). Effect of melatonin on the maintenance of cholesterol homeostasis in the rat. Endocrine Research, 21(3), 681-696.
Corzo, A., Kidd, M. T., Thaxton, J. P., & Kerr, B. J. (2005). Dietary tryptophan effects on growth and stress responses of male broiler chicks. British Poultry Science46(4), 478–484.
Czesnikiewicz-Guzik, M., Konturek, S. J., Loster, B., Wisniewska, G., & Majewski, S. (2007). Melatonin and its role in oxidative stress related diseases of oral cavity. Journal of Physiology and Pharmacology58(3), 5-19.
Dairo, F. A. S., Adesehinwa, A. O. K., Oluwasola, T. A., & Oluyemi, J. A. (2010). High and low dietary energy and protein levels for broiler chickens. African Journal of Agricultural Research5(15), 2030-2038.
Dawari, P., & Danishyar, M. (2017). The effect of different levels of tryptophan on performance, carcass traits and some blood parameters of broiler chickens. Journal of Animal Research (Iranian Journal of Biology), 2, 157-164. (In Farsi)
Del Angel-Meza, A. R., Davalos-Marin, A. J., Ontiveros-Martinez, L. L., Ortiz, G. G., Beas-Zarate, C., Chaparro-Huerta, V., Torres-Mendoza, B. M., & Bitzer-Quintero, O. K. (2011). Protective effects of tryptophan on neuro-inflammation in rats after administering lipopolysaccharide. Biomedicine & Pharmacotherapy, 65(3), 215-219.
Duarte, K. F., Junqueira, O. M., Filardi, R. S., Siqueira, J. C., Puzotti, M. M., Garcia, E. A., Molino, A. B., & Laurentiz, A. C. (2013). Digestible tryptophan requirements for broilers from 22 to 42 days old. Revista Brasileira de Zootecnia42(10), 728-733.
Emadi, M., Kaveh, K., Jahanshiri, F., Hair-Bejo, M., Ideris, A., & Alimon, A. R. (2010). Dietary tryptophan effects on growth performance and blood parameters in broiler chicks. Journal of Animal and Veterinary Advances9(4), 700-704.
Farran, M. T., & Thomas, O. P. (1992). Valine deficiency. b. The effect of feeding a valine-deficient diet during the starter period on performance and leg abnormality of male broiler chicks. Poultry Science71(11), 1885-1890.
Frank, D. L., Smith, T. K., & Bayley, H. S. (1988). A role for Tryptophan in regulation of protein synthesis in porcine muscle. Journal of Nutrition118(4), 445-449.
Hiramoto, K. T., Muramatsu, T., & Okumura, J. (1990). Effect of methionine and lysine deficiencies on protein synthesis in the liver and oviduct and in the whole body of laying hens. Poultry Science69(1), 84-89.