درمان کاندیدیازیس واژنی تجربی با عصاره ی اتانولی بره موم در بز

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار گروه بیماری های درونی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

2 دانشیار گروه بیماری های درونی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

3 دانشیار گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

4 استادیار گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

5 دانشیار گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران

چکیده

کاندیدا آلبیکنس به عنوان فلور طبیعی فرصت طلب در سطح پوست و مخاطات زندگی می­کند که با فراهم شدن شرایط و رشد بیش از حد، باعث بروز علائم بالینی کاندیدیازیس می­گردد.  تجویز پروفیلاکتیک و درمانی برخی داروهای ضد قارچ باعث ایجاد مقاومت دارویی شده است، لذا امروزه نیاز به معرفی داروهای جدیدتری جهت درمان کاندیدیازیس می­باشد.  در این تحقیق از 12 رأس بز ماده 8 ماهه با وزن تقریبی 20 کیلوگرم استفاده شد.  حیوانات بعد از ایجاد کاندیدیازیس واژنی با کاندیدا آلبیکنس (PTCC: 5027)، به صورت کاملاً تصادفی به چهار گروه درمان شونده با عصاره­ی اتانولی بره موم، درمان شونده با پماد نیستاتین، درمان شونده با گلیسرین و گروه عدم درمان تقسیم شدند.  در این تحقیق جراحات مخاطی ظرف مدت ۵ روز ایجاد گردید.  عصاره­ی اتانولی بره موم طی مدت ۵ روز و نیستاتین طی مدت ۷ روز نشانه­های بالینی کاندیدیازیس واژنی را برطرف کردند.  جراحات مخاطی ایجاد شده در گروه­های درمان شونده با گلیسرین و عدم درمان تا ۳ هفته بعد با گذشت زمان وخیم­تر شدند.  در بررسی بافت­شناسی نیز اثرات ضد التهابی، ترمیم ضایعات، بازسازی غدد عرق، سباسه و فولیکول­های مو و حذف آبسه از درم، در گروه­های درمانی با عصاره­ی اتانولی بره موم و نیستاتین نسبت به گروه­های عدم درمان و درمان شده با گلیسرین به طور واضحی مشخص بود.  نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که عصاره­ی اتانولی بره موم در مقایسه با نیستاتین در مدت زمان کوتاه­تری قادر به درمان جراحات کاندیدیازیس واژنی در بز است.

کلیدواژه‌ها


Aguero, M.; Svetaz, L.; Sánchez, M.; Luna, L.; Lima, B. and López, M.L. (2011). Argentinean Andean propolis associated with the medicinal plant Larreanitida Cav. (Zygophyllaceae). HPLC–MS and GC–MS characterization and antifungal activity. Food and Chemical Toxicology, 49 (5): 1970-1978.

Ahangari, A.; Ownagh, A.; Tehrani, A. and Tukmechi, A. (2011). The effect of Ethanol Extract of Propolis (EEP) on the experimentally induced Candida keratitis in rabbits. Tehran University Medical Journal, 69 (1): 22-28.

Alencar, S.; Oldoni, T.; Castro, M.L.; Cabral, I.S.; Costa-Neto, C.M.; Cury, J.A. et al. (2007). Chemical composition and biological activity of a new type of Brazilian propolis: Red propolis. Journal of Ethnopharmacology, 113 (2): 278-283.

Andrade, A.; Finger, D.; Machado, C.S.; Schmidt, E.M.; Costa, P.M.; Nunes Alves, A.P.N. et al. (2011). In vivo antitumoural activity and composition of an oil extract of Brazilian propolis. Food Chemistry, 126 (11): 1239-1245.

Bancroft, J.D. and Stevens, A. (1995). Theory AND Practice of Histological Techniques. 4th ed. New York, Churchill-Livingstone, P: 396.

Cardenas-freytag, L.; Steele, C.; Wormley, F.L.; Cheng, E.; Clements, J.D.; and Fidel, P.L. (2002). Partial protection against experimental vaginal candidiasis after mucosal vaccination with heat-killed Candida albicans and the mucosal adjuvant LT (R192G). Medical Mycology, 40 (3): 291-299.

Castaldo, S. and Capasso, F. (2002). Propolis, an old remedy used in modern medicine. Fitoterapia 73 (1): 1-6.

Diamond, R.D.; Clark, R.A. and Haudenschild, C.C. (1980). Damage to Candida albicans hyphae and pseudohyphae by the mycloperoxidase system and oxidative products of neutrophil etabolism in vitro. The Journal of Clinical Investigation, 66 (5): 908-917.

Eslami Milanee, K.; Tehrani, A.; Najjarnejad, V.; Ownagh, A. and Pourjabali, M. (2018). Histopathology of propolis ethanolic extract (EEP) effects on inflammatory reactions in experimental cutaneous candidiasis in goats. Medical Journal of Tabriz University of Medical Sciences and Health Services, 40 (3): 16-25.

Fidel, P.L.; Cutright, J. and Steele, C. (2000). Effects of Reproductive Hormones on Experimental Vaginal Candidiasis. Infection and Immunity, 68 (2): 651-657.

Fidel, P.L. and Sobel, J.D. (1998). Protective immunity in experimental candida vaginitis. Research in Immunology, 149 (4-5): 361-373.

Jubb, K.V.F.; Kennedy, P.C. and Palmer, N. (2016). Pathology of domestic animals. 6th ed. United States of America, Elsevier Saunder, P: 647.

Kalogeropoulos, N.; Konteles, S.; Troullidou, E.; Mourtzinos, I. and Karathanos, V.T. (2009). Chemical composition, antioxidant activity and antimicrobial properties of propolis extracts from Greece and Cyprus. Food Chemistry, 116 (9): 452-461.

Khosravi, A.; Shokri, H. and Yahyarayat, R. (2005). Veterinary mycology. 1st ed. Tehran, Jahaddaneshgahi Press, P: 36. (In Persian)

Liberio, S.; Pereira, A.; Varghese, S.; Thomas-George, B.; Kandathil-Thajuraj, P.; Baby, D. et al. (2011). Antimicrobial activity against oral pathogens and immunomodulatory effects and toxicity of geopropolis produced by the stingless bee Meliponafasciculata Smith. BMC Complementary and Alternative Medicine, 108 (11): 1472.

Mauricio, J. and Bankova, V. (2011). Propolis: Is there a potential for the development of new drugs? Journal of Ethnopharmacology, 133 (10): 253-260.

McGavine, D.M. and Zackary, J.F. (2012). Pathologic Basis of Veterinary Disease. 5th ed. United States of America, Elsevier Mosby. Pp: 335-336.

Mohammadzadeh, S.; Shariatpanahi, M.; Hamedi, M.; Ahmadkhaniha, R.; Samadi, N. and NasserOstad, S. (2007). Chemical composition, oral toxicity and antimicrobial activity of Iranian Propolis. Food Chemistry, 103: 1097-1103.

Nash, E.E.; Peters, B.M.; Lilly, E.A.; Noverr, M.C. and Fidel, P.L. (2016). A Murine Model of Candida glabrata Vaginitis Shows No Evidence of an Inflammatory Immunopathogenic Response. PLoS ONE 11 (1): 1-14.

Ownagh, A. and Adibhesami, M. (2012). Treatment of vaginal candidiasis by ethanolic extract of propolis in rabbit. Armaghane-danesh, Yasuj University of Medical Sciences, 17(3): 233-242.

Ownagh, A.; Tukmechi, A.; Adibhesam, M. and Ebrahimzadeh, S. (2010). Comprative study on the effect of ethanol extract of propolis collected from west Azarbaijan apiaries against dermatophytes and nondermathophytes fungi. Urmia Medical Journal, 21 (3): 206-214.

Polaquini, S.; Svidzinski, T.; Kemmelmeier, C. and Gasparetto, A. (2006). Effect of aqueous extract from Neem (Azadirachtaindica A. Juss) on hydrophobicity, biofilm formation and adhesion in composite resin by Candida albicans. Archives of Oral Biology, 51 (2): 482-490.

Popova, M.; Trusheva, B.; Antonova, D.; Cutajar, S.; Mifsud, D.; ClaudeFarrugia, C. and et al. (2011). The specific chemical profile of Mediterranean propolis from Malta. Food Chemistry, 126 (5): 1431-1435.

Pritt, B.; Gibson, L.E. and Comfere, N.I. (2014). Diagnosis of deep cutaneous fungal infections: correlation between skin tissue culture and histopathology. Journal of The American Academy of Dermatology, 71 (2): 293-301.

Segal, E. and Frenkel, M. (2018). Experimental in vivo models of candidiasis. Journal of Fungi, 21 (4): 2-10.

Shokri, H.; Khosravi, A. and Yalfani, R. (2011). Antifungal efficacy of propolis against fluconazole-resistant Candida glabrata isolates obtained from women with recurrent vulvovaginal candidiasis. International Journal of Gynecology and Obstetrics, 27 (3): 158-165.

Storti-Filho, A.; Damke, E.; Carrara, M.A.; Batista, M.R.; Donatti, L.; Boer, C.G. et al. (2011). Effects of depomedroxyprogesterone acetate on the development and maintenance of Candida albicans in the vagina of oophorectomized Wistar rats (Rattus norvegicus). Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences, 47 (1): 167-174.

Sullivan, D.; Moran, G.; Al-Mosaid, A.; Stokes, C.; Vaughan, C. and Coleman, D.C. (2004). Comparison of the epidemiology, drug resistance mechanisms, and virulence of Candida dubliniensis and Candida albicans. FEMS Yeast Research, 4 (4-5): 369-376.