بررسی پلی مورفیسم کدون 136 ( A-V) و کدون 171 ( H-Q-R ) برای ارزیابی ابتلای به اسکرپی در گوسفندان اکوتیپ ماکویی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشیار، گروه بیوشیمی بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران

2 دانش آموخته دکترای حرفه ای، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ارومیه، ارومیه، ایران

3 دانش آموخته دکترای تخصصی بیوشیمی بالینی، گروه بیوشیمی بالینی، دانشکده پزشکی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران

4 دانشیار، گروه آسیب شناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ارومیه، ارومیه، ایران

چکیده

    بیماری­های پریونی در دام می­توانند خطر بالقوه­ای برای انسان محسوب شوند.  نژاد ماکویی از منابع مهم پروتین در کشور می­باشد.  در این مطالعه وضعیت پلی­مورفیسم کدون­های 136 و 171 پروتئین­های پریونی و ژنوتیپ­ های حاصل از آن در گوسفندان اکوتیپ ماکویی بررسی شد.  از 60 گوسفند ماکویی نمونه­ خون وریدی تهیه و DNA استخراج شد.  پلی­ مورفیسم کدون 136 (A-V) و کدون 171 (H-Q-R) به طریق PCR با پرایمر اختصاصی بررسی گردید.  نتایج نشان داد که در کدون 136 آلل A (65 درصد) به شکل معنی­ داری بیشتر از آلل V (35 درصد) است.  ژنوتیپ AA (%67/46) نیز شایع­ترین ژنوتیپ مشاهده شده بود.  در کدون 171 نیز آلل­های Q و R به شکل معنی­داری بیشتر از آلل H می­باشد.  به علاوه آلل R نیز به صورت معنی­داری کمتر از آلل Q است.  آلل Q (%33/58) و ژنوتیپ QQ (40 درصد) شایع­ترین آلل و ژنوتیپ بودند.  در مجموع می­توان نتیجه­ گیری کرد که برنامه­ریزی کنترل مؤثر اصلاح نژاد و ریشه­ کنی موفقیت­آمیز ژنوتیپ­ های مستعد به بیماری اسکراپی در نژاد گوسفندان اکوتیپ ماکویی ایرانی امکان­ پذیر نخواهد بود مگر این که حساسیت ژنوتیپ­های مختلف در نژادهای گوسفند ماکویی مشخص شود.

کلیدواژه‌ها


Baylis, M., & McIntyre, K. M. (2004). Scrapie control under new strain. Nature, 432(7019), 810-811.
Boukouvala, E., Gelasakis, A. I., Kanata, E., Fragkiadaki, E., Giadinis, N. D., Palaska, V., Christoforidou, S., Sklaviadis, T., & Ekateriniadou, L. V. (2018). The association between 171 K polymorphism and resistance against scrapie affection in Greek dairy sheep. Small Ruminant Research, 161, 51-56.
Cassmann, E. D., & Greenlee, J. J. (2020). Pathogenesis, detection, and control of scrapie in sheep. Am J Vet Res, 81(7), 600-614. https://doi.org/10.2460/ajvr.81.7.600
Chaudhary, S., & Chaudhary, M. (2013). Scrapie: A neuro degenerative disease in sheep-A review. Agricultural Reviews, 34(1), 79-85.
Curcio, L., Sebastiani, C., Di Lorenzo, P., Lasagna, E., & Biagetti, M. (2016). Review: A review on classical and atypical scrapie in caprine: Prion protein gene polymorphisms and their role in the disease. Animal, 10(10), 1585-1593. https://doi.org/10.1017/s1751731116000653
DeSilva, U., Guo, X., Kupfer, D., Fernando, S., Pillai, A., Najar, F., So, S., Fitch, G., & Roe, B. (2003). Allelic variants of ovine prion protein gene (PRNP) in Oklahoma sheep. Cytogenetic and genome research, 102(1-4), 89-94.
Gmür, A., Gaillard, C., & Dolf, G. (2004). Characterization of the prion protein gene (PRNP) region in Swiss sheep breeds. Journal of Animal Breeding and Genetics, 121(3), 216-220.
GOMBOJAV, A., ISHIGURO, N., HORIUCHI, M., SERJMYADAG, D., BYAMBAA, B., & SHINAGAWA, M. (2003). Amino acid polymorphisms of PrP gene in Mongolian sheep. Journal of veterinary medical science, 65(1), 75-81.
Houston, F., Goldmann, W., Foster, J., González, L., Jeffrey, M., & Hunter, N. (2015). Comparative Susceptibility of Sheep of Different Origins, Breeds and PRNP Genotypes to Challenge with Bovine Spongiform Encephalopathy and Scrapie. PloS one, 10(11), e0143251-e0143251. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0143251
Hunter, N. (2007). Scrapie—Uncertainties, biology and molecular approaches. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of Disease, 1772(6), 619-628.
Hussein, M. F., & Al-Mufarrej, S. I. (2004). Prion Diseases: A Review. Scientific Journal of King Faisal University (Basic and Applied Sciences), 5(2), 1425.
Jeong, M.-J., Kim, Y.-C., & Jeong, B.-H. (2018). Prion-like protein gene (PRND) polymorphisms associated with scrapie susceptibility in Korean native black goats. PloS one, 13(10).
Lan, Z., Li, J., Sun, C., Liu, Y., Zhao, Y., Chi, T., Yu, X., Song, F., & Wang, Z. (2014). Allelic variants of PRNP in 16 Chinese local sheep breeds. Arch Virol, 159(8), 2141-2144. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2048-9
Mead, S., Lloyd, S., & Collinge, J. (2019). Genetic Factors in Mammalian Prion Diseases. Annu Rev Genet, 53, 117-147. https:// doi.org/ 10.1146/ annurev-genet-1202-092352-13
Migliore, S., Agnello, S., D’Avola, S., Goldmann, W., Presti, V. D. M. L., & Vitale, M. (2017). A cross-sectional study of PRNP gene in two native Sicilian goat populations in Italy: a relation between prion gene polymorphisms and scrapie incidence. Journal of genetics, 96(2), 319-325.
Pandeya, D. R., Acharya, N., & Hong, S.-T. (2010). The prion and its potentiality. Biomedical Research-Tokyo, 21(2).
Salami, S., Zadeh, R. A., Omrani, M. D., Ramezani, F., & Amniattalab, A. (2011). Allelic frequency and genotypes of prion protein at codon 136 and 171 in Iranian Ghezel sheep breeds. Prion, 5(3), 228-231. https://doi.org/10.4161/pri.5.3.16098
Scheckel, C., & Aguzzi, A. (2018). Prions, prionoids and protein misfolding disorders. Nature Reviews Genetics, 19(7), 405-418.
Schulz-Schaeffer, W. J., Wemheuer, W. M., & Wrede, A. (2020). Prion Diseases: Conformational Changes of a Protein Create an Unconventional Infectious Agent. In Emerging and Reemerging Viral Pathogens (pp. 479-488). Elsevier.
Teferedegn, E. Y., Yaman, Y., & Un, C. (2020). Five novel PRNP gene polymorphisms and their potential effect on Scrapie susceptibility in three native Ethiopian sheep breeds. BMC Vet Res, 16(1), 122. https://doi.org/10.1186/s12917-020-02336-0
Tongue, S., Pfeiffer, D., Warner, R., Elliott, H., & Vilas, V. D. R. (2006). Estimation of the relative risk of developing clinical scrapie: the role of prion protein (PrP) genotype and selection bias. Veterinary Record, 158(2), 43-50.
Yoshida, N., & Soto, P. (2019). Polymorphisms Modulate Sheep Prion Protein Susceptibility to Misfolding by Altering the Residue Network of Interactions. Biophysical Journal, 116(3), 187a.