همودینامیک شریان رحمی سگ در طول فحلی القاء شده به وسیله بروموکریپتین

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانش آموخته دکترای حرفه ای دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد

2 دانشیار، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد

3 دانشیار گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد

چکیده

    بروموکریپتین ((BRM)؛ به عنوان یک عامل دوپامینرژیک) پرولاکتین سرم را کاهش می­دهد و یکی از معمول­ترین داروها برای القای یک چرخه­ی فحلی موفق در سگ­ها است که برخی از عوارض جانبی بالینی مرتبط با این دارو است.  این مطالعه با هدف بررسی همودینامیک شریان رحمی (UA) پس از تجویز دوزهای افزایشی BRM انجام شد.  در این مطالعه پنج سگ غیر آبستن از نژادهای مخلوط در مرحله­ی آنستروس دوزهای خوراکی BRM را در روزهای 1 و 2 (100 میکروگرم بر کیلوگرم)، روزهای 3 و 4 (200 میکروگرم بر کیلوگرم) دریافت کردند.  روز 5 به بعد (400 میکروگرم بر کیلوگرم) تا بروز پرواستروس.  سه سگ با فحلی بدون مداخله به عنوان شاهد در نظر گرفته شدند.  سیتولوژی واژینال، معاینه اولتراسوند و سنجش پروژسترون سرم (P4) در فواصل 2-3 روز انجام شد.  پروستروس در 17/1±6/6 روز پس از درمان BRM القا شد.  BRM به طور قابل توجهی P4 سرم را به 0.78±15.1 در مقایسه با گروه کنترل (13/1 ± 5/21 نانوگرم در میلی­لیتر) در طول فحلی القایی کاهش داد.  BRM به طور قابل توجهی همودینامیک UA را در طی روزهای قبل از پروستروس تغییر داد.  میانگین شاخص پالس UA، شاخص مقاومت و حداکثر سرعت سیستولیک در فحلی ناشی از BRM به طور قابل توجهی کمتر از گروه کنترل بود.  نتایج این مطالعه سطوح پایین‌تر P4 سرم و برخی تغییرات در همودینامیک رحم سگ در طول فحلی ناشی از BRM در مقایسه با فحلی با بیان طبیعی نشان داد.  چرخه­ی القایی در سگ‌هایی با سطوح سرمی P4 پایین‌تر و همودینامیک UA تغییر یافته، می­بایست برای پیامدهای بارداری بعدی در فحلی ناشی از BRM در نظر گرفته شود.

کلیدواژه‌ها


Alvarez-Clau, A., & Liste, F. (2005). Ultrasonographic characterization of the uterine artery in the nonestrus bitch [Article]. Ultrasound in Medicine and Biology, 31(12), 1583-1587. https://doi.org/10.1016/j.ultrasmedbio.2005.08.003
Batista, P. R., Gobello, C., Corrada, Y., Pons, E., Arias, D. O., & Blanco, P. G. (2013). Doppler ultrasonographic assessment of uterine arteries during normal canine puerperium. Animal Reproduction Science, 141(3-4), 172-176. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.07.013
Beijerink, N. J., Dieleman, S. J., Kooistra, H. S., & Okkens, A. C. (2003). Low doses of bromocriptine shorten the interestrous interval in the bitch without lowering plasma prolactin concentration. Theriogenology, 60(7), 1379-1386. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14511790
Bergeron, L. H., Nykamp, S. G., Brisson, B. A., Madan, P., & Gartley, C. J. (2013). An evaluation of B-mode and color Doppler ultrasonography for detecting periovulatory events in the bitch. Theriogenology, 79(2), 274-283. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2012.08.016
Blanco, P. G., Arias, D., Rube, A., Barrena, J. P., Corrada, Y., & Gobello, C. (2009). An experimental model to study resistance index and systolic/diastolic ratio of uterine arteries in adverse canine pregnancy outcome [Conference Paper]. Reproduction in Domestic Animals, 44(SUPPL. 2), 164-166. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2009.01369.x
Blanco, P. G., Arias, D. O., & Gobello, C. (2008). Doppler ultrasound in canine pregnancy. Journal of Ultrasound in Medicine, 27(12), 1745-1750. https://doi.org/10.7863/jum.2008.27.12.1745
Blanco, P. G., Rodríguez, R., Rube, A., Arias, D. O., Tórtora, M., Díaz, J. D., & Gobello, C. (2011). Doppler ultrasonographic assessment of maternal and fetal blood flow in abnormal canine pregnancy. Animal Reproduction Science, 126(1-2), 130-135. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2011.04.016
Bollwein, H., Heppelmann, M., & Lüttgenau, J. (2016). Ultrasonographic Doppler use for female reproduction management. Veterinary Clinics: Food Animal Practice, 32(1), 149-164.
Bollwein, H., Kolberg, B., & Stolla, R. (2004). The effect of exogenous estradiol benzoate and altrenogest on uterine and ovarian blood flow during the estrous cycle in mares. Theriogenology, 61(6), 1137-1146.
Bollwein, H., Meyer, H., Maierl, J., Weber, F., Baumgartner, U., & Stolla, R. (2000). Transrectal Doppler sonography of uterine blood flow in cows during the estrous cycle. Theriogenology, 53(8), 1541-1552.
Campbell, S., Bourne, T. H., Waterstone, J., Reynolds, K. M., Crayford, T. J., Jurkovic, D., Okokon, E. V., & Collins, W. P. (1993). Transvaginal color blood flow imaging of the periovulatory follicle. Fertility and Sterility, 60(3), 433-438.
Gobello, C., de la Sota, R. L., & Goya, R. G. (2001). Study of the change of prolactin and progesterone during dopaminergic agonist treatments in pseudopregnant bitches.. Animal Reproduction Science, 66(3-4), 257-267. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11348786
Jöchle, W., Arbeiter, K., Post, K., Ballabio, R., & D'ver, A. (1989). Effects on pseudopregnancy, pregnancy and interoestrous intervals of pharmacological suppression of prolactin secretion in female dogs and cats. Journal of Rreproduction and Fertility. Supplement, 39, 199.
Johnston, S. D., Root Kustritz, M. V., & Olson, P. S. (2001). Canine and Feline Theriogenology. Saunders, London, UK, PP: 32-40.
Johnston, S. D., & Root, M. V. (1995, September). Serum progesterone timing of ovulation in the bitch. In Proceedings of the Annual Meeting of the Society of Theriogenology: 29-30 September 1995; Nashville, Tennessee/USA (pp. 195-203).
Kooistra, H. S., Okkens, A. C., Bevers, M. M., Popp-Snijders, C., van Haaften, B., Dieleman, S. J., & Schoemaker, J. (1999). Bromocriptine-induced premature oestrus is associated with changes in the pulsatile secretion pattern of follicle-stimulating hormone in beagle bitches. Journal of Reproduction and Fertility, 117(2), 387-393. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10690207
Kutzler, M. A. (2005). Induction and synchronization of estrus in dogs. Theriogenology, 64(3), 766-775. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.05.025
Kutzler, M. A. (2007). Estrus induction and synchronization in canids and felids [Review]. Theriogenology, 68(3), 354-374. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2007.04.014
Kutzler, M. A. (2018). Estrous Cycle Manipulation in Dogs. Veterinary Clinics: Small Animal Practice, 48(4), 581-594.
Manku, M., Nassar, B., & Horrobin, D. (1973). Effects of prolactin on the responses of rat aortic and arteriolar smooth-muscle preparations to noradrenaline and angiotensin. The Lancet, 302(7836), 991-994.
Molinari, C., Grossini, E., Mary, D. A., Uberti, F., Ghigo, E., Ribichini, F., Surico, N., & Vacca, G. (2007). Prolactin induces regional vasoconstriction through the β2-adrenergic and nitric oxide mechanisms. Endocrinology, 148(8), 4080-4090.
Nogueira, I. B., Almeida, L. L., Angrimani, D. S. R., Brito, M. M., Abreu, R. A., & Vannucchi, C. I. (2017). Uterine haemodynamic, vascularization and blood pressure changes along the oestrous cycle in bitches [Article]. Reproduction in Domestic Animals, 52, 52-57. https://doi.org/10.1111/rda.12859
Okkens, A. C., Bevers, M. M., Dieleman, S. J., & Willems, A. H. (1985). Shortening of the interoestrous interval and the lifespan of the corpus luteum of the cyclic dog by bromocryptine treatment. Veterinary Quarterly, 7(3), 173-176. https://doi.org/10.1080/01652176.1985.9693979
Resnik, R., Brink, G. W., & Plumer, M. H. (1977). The effect of progesterone on estrogen-induced uterine blood flow. American Journal of Obstetrics and Gynecology, 128(3), 251-254.
SAS Institute Inc. ( 2009). SAS/STAT ® 9.2 User’s Guide. In SAS Institute Inc.
Stumpe, K., Higuchi, M., Kolloch, R., KRÜCK, F., & Vetter, H. (1977). Hyperprolactinaemia and antihypertensive effect of bromocriptine in essential hypertension: Identification of abnormal central dopamine control. Lancet, 310(8031), 211-214.
Temizkan, O., Temizkan, S., Asicioglu, O., Aydin, K., & Kucur, S. (2015). Color Doppler analysis of uterine, spiral, and intraovarian artery blood flow before and after treatment with cabergoline in hyperprolactinemic patients. Gynecoogyl Endocrinology, 31(1), 75-78. https://doi.org/10.3109/09513590.2014.958989
Tinkanen, H., Kujansuu, E., & Laippala, P. (1994). Vascular resistance in uterine and ovarian arteries: its association with infertility and the prognosis of infertility. European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology, 57(2), 111-115.
Verstegen, J., Onclin, K., Silva, L., & Concannon, P. (1999). Effect of stage of anestrus on the induction of estrus by the dopamine agonist cabergoline in dogs. Theriogenology, 51(3), 597-611.
Villalón, C. M., Ramírez-San Juan, E., Sánchez-López, A., Bravo, G., Willems, E. W., Saxena, P. R., & Centurión, D. (2003). Pharmacological profile of the vascular responses to dopamine in the canine external carotid circulation [Article]. Pharmacology and Toxicology, 92(4), 165-172. https://doi.org/10.1034/j.1600-0773.2003.920406.x
Weiner, Z., Thaler, I., Levron, J., Lewit, N., & Itskovitz-Eldor, J. (1993). Assessment of ovarian and uterine blood flow by transvaginal color Doppler in ovarian-stimulated women: correlation with the number of follicles and steroid hormone levels. Fertility and Sterility, 59(4), 743-749.