ارتباط تخمک‌گذاری‌های منفرد و دوتایی با غلظت پروژسترون سرم و تعداد جنین در بزهای ممسنی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران

2 دانشیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران

3 استاد گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران

4 استادیار گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج - ایران

چکیده

    تعیین تأثیر تخمک‌گذاری‌های منفرد در مقابل دوتایی بر غلظت پروژسترون و حجم بافت لوتئال برای مدیریت بهتر تولیدمثل در بزها بسیار مهم است.  هدف از این مطالعه بررسی ارتباط تعداد تخمک‌گذاری، حجم بافت لوتئال و غلظت پروژسترون در بزهای ممسنی بود.  بدین منظور رحم و تخمدان‌های 192 رأس بز تازه کشتار شده در کشتارگاه طی فصول تولیدمثل و غیر تولیدمثلی جمع‌آوری شد.  پیش از کشتار، نمونه‌های خون گرفته شد و غلظت پروژسترون آنالیز شد.  گروه‌های مورد مطالعه در فصل غیر تولیدمثلی شامل: 1- تخمک‌گذاری منفرد؛ 2- تخمک‌گذاری دوتایی یک‌طرفه و 3- تخمک‌گذاری دوتایی دوطرفه در بزهای غیر آبستن، بودند.  گروه‌های مورد مطالعه طی فصل تولیدمثلی شامل: 1- تخمک‌گذاری منفرد (غیر آبستن)؛ 2- تخمک‌گذاری دوتایی یک‌طرفه (غیر آبستن)؛ 3- تخمک‌گذاری دوتایی دوطرفه (غیر آبستن)؛ 4- تخمک‌گذاری منفرد با یک جنین؛ 5- تخمک‌گذاری منفرد با یک جنین؛ 6- تخمک‌گذاری دوتایی یک‌طرفه با یک جنین؛ 7- تخمک‌گذاری دوتایی یک‌طرفه با دو جنین؛ 8- تخمک‌گذاری دوتایی دوطرفه با یک جنین و 9- تخمک‌گذاری دوتایی دوطرفه با دو جنین بودند.  نتایج نشان داد که تخمدان راست از نظر تخمک‌گذاری در هر دو فصل تولیدمثلی و همچنین غیر تولیدمثلی نقش تعیین کننده دارد.  در هر دو مورد بزهای آبستن و غیر آبستن، حجم کل جسم زرد و همچنین غلظت پروژسترون سرم در تخمک‌گذاری دوتایی به طور معنی‌داری بیش­تر بود.  حجم کل جسم زرد و غلظت پروژسترون سرم در بزهای با تخمک‌گذاری منفرد و دو جنین نسبت به بزهای با تخمک‌گذاری منفرد و یک جنین به طور معنی‌داری بیش­تر بود.  نتیجه‌گیری شد که اگر چه بالاتر بودن غلظت پروژسترون در بز، با حجم کل جسم زرد مرتبط است اما این سطح یک پیش‌بینی قابل اعتماد برای تعیین نمودن تعداد جنین در هر بز نیست.

کلیدواژه‌ها


Alosta, R. A., Vaughan, L., & Collins, J. D. (1998). An abattoir survey of ovine reproductive tracts in Ireland. Theriogenology, 50(3): 457-464.
Bartlewski, P. M., Beard, A. P., & Rawlings, N. C. (1999). An ultrasonographic study of luteal function in breeds of sheep with different ovulation rates. Theriogenology, 52(1): 115-130.
Bech-Sabat, G., Lopez-Gatius, F., Yaniz, J. L., Garcıa-Ispierto, I., Santolaria, P., Serrano, B., et al. (2008). Factors affecting plasma progesterone in the early fetal period in high producing dairy cows. Theriogenology, 69(4): 426-432.
Boscos, C. M., Samartzi, F. C., Lymberopoulos, A. G., Stefanakis, A., & Belibasaki, S. (2003). Assessment of progesterone concentration using enzyme immunoassay, for early pregnancy diagnosis in sheep and goats. Reproduction in Domestic Animal, 38(3): 170-174.
Chacur, M. G. M., Arrebola, T. A. H., Ibrahim, D. B., Sanches, O. C., Gabriel-Filho, L. R. A., Cremasco, C. P., et al. (2015). Characterization and cellular proliferation of ovarian structures of ewes by the technique of Agnor: ovarian morfometry and correlations. Brazilian Journal of Biosyatems Engineering, 9(3): 209-220.
Cushman, R. A., Allan, M. F., Snowder, G. D., Thallman, R. M., & Echternkamp, S. E. (2005). Evaluation of ovulation rate and ovarian phenotype in puberal heifers from a cattle population selected for increased ovulation rate. Journal of Animal Science, 83(8): 1839-1844.
Fields, M. J., & Fields, P. A. (1996). Morphological characteristics of the bovine corpus luteum during the estrous cycle and pregnancy. Theriogenology, 45(7): 1295-1326.
Fritzsche, P., Riek, M., & Gattermann, R. (2000). Effects of social stress on behavior and corpus luteum in female golden hamsters (Mesocricetus auratus). Physiology and Behavior, 68(5): 625-30.
Ginther, O. J., & Hoffman, M. M. (2016). Interactions of side (left and right ovary) with the number of follicles per ovary and with the intraovarian relationships between dominant follicle and corpus luteum in heifers. Theriogenology, 86(4): 907-913.
Gur, S., Turk, G., Demirci, E., Yuce, A., Sonmez, M., Ozer, S., et al. (2011). Effect of pregnancy and foetal number on diameter of corpus luteum, maternal progesterone concentration and oxidant⁄Antioxidant balance in ewes. Reproduction in Domestic Animal, 46(2): 289-295.
Islam, M. M., Mondal, S. K., & Patel, B. H. M. (2013). Post-synchronization progesteroneprofile of indigenous goats during early pregnancy. The Indian Veterinary Journal, 90(3): 22-23.
KaramiShabankareh, H., Habibizad, J., Sarsaifi, K., Cheghamirza, K., & Kazemein Jasemi, V. (2010). The effect of the absence or presence of a corpus luteum on the ovarian follicular population and serum oestradiol concentrations during the estrous cycle in Sanjabi ewes. Small Ruminant Research, 93(2-3): 180-185.
KaramiShabankareh, H., Habibizad, J., & Torki, M. (2009). Corpus luteum function following single and double ovulation during estrous cycle in Sanjabi ewes. Animal Reproduction Science, 114(4): 362-369.
KaramiShabankareh, H., Hajarian, H., Shahsavari, M., & Moradinejad, R. (2015). In vivo and in vitro study of the function of the left and right bovine ovaries. Theriogenology, 84(5): 724-731.
Karen, A., Amiri, B. E., Beckers, J., Sulon, J., Taverne, M. A. M., & Szenci, O. (2006). Comparison of accuracy of transabdominal ultrasonography, progesterone and pregnancy-associated glycoproteins tests for discrimination between single and multiple pregnancy in sheep. Theriogenology, 66(2): 314-322.
Kaulfuss, K. H., Moritz, S., & Giucci, E. (2003). The influence of the ovulation rate on ultrasonically determined ovine corpus luteum morphometry and progesterone concentrations in cyclic and early pregnant sheep. Deutsche Tierarztliche Wochenschrift, 110(6): 249-254.
KermaniMoakhar, H., Kohram, H., Salehi R., & Zare-Shahneh, A. (2010). Follicular and ovulatory responses of the right versus left ovaries to eCG treatment in Shall Iranian ewes. African Journal of Biotechnology, 9(10): 1523-1527.
Khan, J. R., & Ludri, R. S. (2002). Hormonal profiles during periparturient period in single and twin fetus bearing Goats. Asian-Australasian Journal of Animal Science, 15(3): 346-351.
Kulcsar, M., Danko, G., Magdy, H. G. I., Reiczigel, J., Forgach, T., Prohaczik, A., et al. (2006). Pregnancy stage and number of fetuses may influence maternal plasma leptin in ewes. Acta Veterinaria Hungarica, 54(2): 221-234.
Kusaka, H., Miura, H., Kikuchi, M., & Sakaguchi, M. (2017). Incidence of double ovulation during the early postpartum period in lactating dairy cows. Theriogenology, 91: 98-103.
 Lehloenya, K. C., Greyling, J. P. C., & Grobler, S. (2008). Effect of season on the superovulatory response in Boer goat does. Small Ruminant Research, 78(1-3): 74-79.
Lopez, H., Caraviello, D. Z., Satter, L. D., Fricke, P. M., & Wiltbank, M. C. (2005). Relationship between level of milk production and multiple ovulations in lactating dairy cows. Journal of Dairy Science, 88(8): 2783-2793.
Majeed, A. F., & Adel, A. M. (2015). In vitro production of ovine embryo. Journal of Veterinary Medical Science, 6(1): 76-84.
Manalu, W., Sumaryadi, M. Y., & Kusumorini, N. (1997). Effect of fetal number on concentrations of circulating maternal serum progesterone and estradiol of does during late pregnancy. Small Ruminant Research, 23(2-3): 117-124.
Mann, G. E., Robinson, R. S., & Hunter, M. G. (2007). Corpus luteum size and function following single and double ovulations in non-lactating dairy cows. Theriogenology, 67(7): 1256-1261.
Martinez, J. A., Sanchez, M. T., Cordero, J. L., Mendoza, G. D., Garcia, C. M., & Garcia, M. (2007). Ovarian follicular dynamics after cauterization of the dominant follicle in anestrous ewes. Animal Reproduction Science, 98(3-4): 225-232.
Medan, M., Watanabe, G., Absy, G., Sasaki, K., Sharawy, S., & Taya, K. (2004). Early pregnancy diagnosis by means of ultrasonography as a method of improving reproductive efficiency in goats. Journal of Reproduction and Development, 50(4): 391-397.
Morales, L., Chavez, R., Ayala, M., & Domlnguez, R. (1998). Effects of unilateral or bilateral superior ovarian nerve section in prepubertal rats on the ovulatory response to gonadotrophin administration. Journal of Endocrinology, 158(2): 213-219.
Nawito, M. F., Mahmoud, K. G. M., Kandiel, M. M. M., Ahmed, Y. F., & Sosa, A. S. A. (2015). Effect of reproductive status on body condition score, progesterone concentration and trace minerals in sheep and goats reared in South Sinai Egypt. African Journal of Biotechnology, 14(43): 3001-3005.
Niswender, G. D., Juengel, J. L., Silva, P. J., Rollyson, M. K., & McIntush, E. W. (2000). Mechanisms controlling the function and life span of the corpus luteum. Physiological Reviews, 80: 1-29.
Pramod, R. K., Sharma, S. K., Singhi, A., Pan, S., & Mitra, A. (2013). Differential ovarian morphometry and follicular expression of BMP15, GDF9 and BMPR1B influence the prolificacy in goat. Reproduction in Domestic Animal, 48(5): 803-809.
Regassa, F., Tamrat, H., & Bekana, M. (2007). Ovarian activity, transuterine embryo migration and prenatal losses in Ethiopian highland ewes. Tropical Animal Health and Production, 39(2): 131-139.
Rezagholizadeh, A., Gharagozlou, F., Akbarinejad, V., & Youssefi, R. (2015). Left-sided ovulation favors more male foals than right-sided ovulation in Thoroughbred mares. Journal of Equine Veterinary Science, 35(1): 31-35.
Shorten, P. R., O’Connell, A. R., Demmers, K. J., Edwards, S. J., Cullen, N. G., & Juenge, J. L. (2013). Effect of age, weight, and sire on embryo and fetal survival in sheep. Journal of Animal Science, 91(10): 4641-4653.
Spell, A. R., Beal, W. E., Corah, L. R., & Lamb, G. C. (2001). Evaluating recipient and embryo factors that affect pregnancy rates of embryo transfer in beef cattle. Theriogenology, 56(2): 287-297.
Starbuck, M. J., Dailey, R. A., & Inskeep, E. K. (2004). Factors affecting retention of early pregnancy in dairy cattle. Animal Reproduction Science, 84(1-2): 27-39.
Voelz, B. E., Cline, G. F., Hart, C. G., Lemley, C. O., & Larson, J. E. (2015). Effect of 2 corpora lutea on blood perfusion, peripheral progesterone, and hepatic steroid-inactivating enzymes in dairy cattle. Journal of Dairy Science, 98(1): 288-294.